ÍNDICE

·      INTRODUCCIÓN Y USO EN EL LABORATORIO

·      EL MÉTODO CIENTÍFICO

·      ¿CÓMO ELABORAR UN INFORME DE LABORATORIO?

·      CUADERNO DE PRÁCTICAS

·      BIBLIOGRAFÍA

·      TRABAJOS DE INVESTIGACIÓN:
-SISTEMÁTICA DE UNA ESPECIE
-PROYECTO DE INVESTIGACIÓN


- INVENTARIO LABORATORIO DE MICROSCOPIOS.








INTRODUCCIÓN Y USO EN EL LABORATORIO


MATERIALES:      
TIPOLOLOGÍA, DIBUJOS Y NOMBRES.

INTRUMENTOS DE OBSERVACIÓN:
·       MICROSCOPIO
·       BINÓCULO
·       ESQUEMA PARTES,MANEJOS Y USOS, PRECAUCIONES

NORMAS DE CONDUCTA A SEGUIR:
·       MEDIDAS DE SEGURIDAD
·       MEDIDAS DE HIGIENE
·       TRABAJO Y PRECAUCIONES

PREPARARACIÓN DE COLORANTES PARA ENSAYOS MICROBIOLÓGICOS:
























PREPARACIÓN DE COLORANTES PARA ENSAYOS MICROBIOLÓGICOS:
   .1.Acido-Alcohol: (decolorante para tinción Ziehl-Neelsen)
o    Ácido clorhídrico concentrado ..........................................................3 ml
o    Etanol 95% ....................................................................................97 ml

2.    Azul de metileno: Colorante de contraste para tinción de flagelos.
o    Azul de metileno................................................................................1 g
o    Agua destilada...............................................................................100 ml

3.    Azul de metileno de Loeffler: Tinciones simples.
o    Solución de hidróxido potásico al 1%.................................................1 ml
o    Azul de metileno, sol. saturada en etanol al 95%...............................30 ml
o    Agua destilada...............................................................................100 ml

4.    Colorante para esporas:
o    Solución acuosa saturada de verde malaquita

5.    Colorante para flagelos de Leifson:
o    Solución A
 Fucsina básica .........................................................................1,2 g
  Etanol 95%.............................................................................100 ml
o    Solución B
Ácido tánico................................................................................3 g
 Agua destilada.........................................................................100 ml
o    Solución C
 Cloruro sódico..........................................................................1,5 g
Agua destilada.........................................................................100 ml
Para preparar la solución de uso, se mezclan cantidades iguales de las soluciones A, B y C y se guarda en frasco cerrado herméticamente en la nevera donde es estable durante varias semanas.


6.    Cristal violeta: Para tinción Gram y tinción simple.
o    Cristal violeta (violeta de genciana)....................................................0,5 g
o    Agua destilada.................................................................................100 ml

7.    Eosina: Para observación de células sanguíneas.
o    Eosina...............................................................................................0,3 g
o    Ácido acético glacial......................................................................0,025 ml
o    Agua destilada...................................................................................100 ml

8.    Fucsina diluida: Para tinción Gram y tinción simple.
o    Fucsina fenicada de Ziehl-Neelsen......................................................10 ml
o    Agua destilada.................................................................................100 ml

9.    Fucsina fenicada de Ziehl-Neelsen: Para tinción ácido-alcohol resistente.
o    Fucsina básica......................................................................................1 g
o    Etanol 95%........................................................................................10 ml
o    Fenol 5% en solución acuosa............................................................100 ml

10. Hematoxilina: Para observación de células sanguíneas.
o    Hematoxilina.........................................................................................2 g
o    Agua destilada......................................................................................1 l

11. Lactofenol: Para preparaciones microscópicas en fresco de mohos.
o    Ácido láctico.....................................................................................100 ml
o    Fenol................................................................................................100 g
o    Glicerol.............................................................................................200 ml
o    Agua.................................................................................................100 ml

12. Lactofenol al Azul Algodón: Para preparaciones en fresco y tinciones de mohos.
o    Solución de azul algodón
  Sol. saturada de azul algodón (azul anilina soluble)......................10 ml
Glicerol.....................................................................................10 ml
Agua.........................................................................................80 ml
Mezclar esta solución con lactofenol a partes iguales


13. Lugol: Solución de yodo para tinción Gram.
o    Yodo...................................................................................................1 g
o    Yoduro potásico..................................................................................2 g
o    Agua destilada.................................................................................300 ml

14. Orceína A: Tinción de cromosomas.
o    Orceína................................................................................................2 g
o    Ácido acético.....................................................................................45,8 ml
o    Ácido clorhídrico 1 mol/l......................................................................8,3 ml
o    Agua..................................................................................................45,8 ml

15. Orceína B: Tinción de cromosomas.
o    Orceína................................................................................................2 g
o    Ácido acético.....................................................................................55 ml
o    Agua..................................................................................................55 ml

16. Safranina: Colorante de contraste para tinción Gram (preferible a la fucsina) y esporas.
o    Safranina.........................................................................................0,25 g
o    Agua destilada..................................................................................100 ml

17. Sudán III: Tinción específica de grasas.
o    Alcohol etílico...................................................................................100 ml
o    Sudán III...................................................................................hasta saturación

18. Verde de metilo acético: Igual composición que la eosina (num. 7)










 EL MÉTODO CIENTÍFICO

·         Cuando queramos averiguar cómo ocurren las cosas que observamos en la naturaleza, debemos seguir una serie de pasos que constituyen el Método Científico.

1.   Planteamiento del problema.
Este paso es fundamental por la sencilla razón de que toda investigación que se realiza tiene como fin la resolución de un problema concreto. ¡¡ Piensa si no, el porqué de las comeduras de “coco” que te haces de vez en cuando!! .

2.   Obtener información.
Una vez que tenemos el problema planteado, necesitamos para su resolución la mayor cantidad de información posible, esta información podemos obtenerla de varias formas: mediante una observación directa, investigando en el laboratorio, por la consulta de bibliografía, etc.
Cuando se tiene mucha información, es conveniente ordenarla en tablas y gráficos, para que el estudio resulte más sencillo.

3.   Expresar nuestra hipótesis.
Con lo que sabéis, ya podéis dar vuestra opinión. Esa opinión recibe el nombre de hipótesis, que no es ni más ni menos que “una suposición de cómo ocurren las cosas”.

4.   Contrastar nuestra hipótesis. Una vez dada nuestra hipótesis (opinión o suposición), hay que comprobar si es correcta o si no lo es; este paso se conoce con el nombre de Contrastación de Hipótesis.

5.   Conclusión.
Si el resultado es contrario, tenemos que volver a  plantear una nueva hipótesis.
Si el resultado de la contrastación da que nuestra hipótesis es correcta, llegamos a la resolución o conclusión del problema que nos habíamos planteado.
Hay que tener en cuenta que esta conclusión seguirá siendo válida mientras no haya ningún hecho que lo contradiga.

Podemos resumir los pasos anteriores en el siguiente cuadro de forma representativa:












¿CÓMO ELABORAR UN INFORME DE LABORATORIO?


*CRITERIOS DE ELABORACIÓN DE UN INFORME CIENTÍFICO DE LABORATORIO:

1.  TITULO Y PORTADA: Debe de ser claro y concreto. Ni muy largo ni muy corto. Preciso y específico.

2.  AUTORES: Debe figurar el nombre del equipo y/o de los autores, Evaluación durante la cual se ha efectuado el trabajo, curso y grupo de los autores.


3.  RESUMEN: En él se recoge, de forma breve, el propósito de la investigación, los resultados más relevantes y las conclusiones principales. Todo ello en 150-250 palabras.

4.  PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL: Se describen los materiales empleados, los componentes y montaje de la práctica, el procedimiento de obtención o las fuentes y se hace referencia a los métodos o técnicas experimentales empleadas, mencionando, no sus aspectos generales, sino los específicos para la investigación empleada.

5.  RESULTADOS: Se presentarán los resultados experimentales de forma ordenada con la ayuda de tablas o gráficas que recojan la información. El mecanismo de la reacción. Se deben describir los pasos recorridos durante el trabajo. Los resultados más relevantes deberán ser destacados y comentados.

6.  DISCUSIÓN: Se relacionan, interpretan y discuten los resultados obtenidos. Se deben señalar los aspectos + y – que se hayan observado.


7.  REFERENCIAS (Fuentes de información): En donde se hará constar todas aquellas fuentes que hayan sido consultadas (libros, revistas, periódicos, folletos, programas de tv…) La referencia bibliográfica debe incluir: Título del libro, autor o autores, editorial; si es una enciclopedia, el nº de tomo y el de paginas consultadas.

8.  ÍNDICE: Es el Sumario de todas las partes del informe, en donde se indicará el nº de páginas en que se encuentra(dado que los folios y hojas han de estar numeradas)

Todas las prácticas que se hagan en clase, deberán seguir los criterios a la hora de elaborar el informe de laboratorio sobre esa práctica.



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CONSEJO:Antes de comenzar cualquiera de las prácticas debemos de reunir los distintos materiales y elementos necesarios para realizar la práctica,ya que disponemos de un tiempo limitado de una hora semanal.Como hemos aprendido,vamos a manipular con componentes y sustancias químicas especiales.Es necesario seguir las normas de seguridad e higiene anteriormente descritas





CUADERNO DE PRÁCTICAS:

ÍNDICE
PRIMER TRIMESTRE.

·       1-Existencia de sales minerales en los esqueletos
·       2-Proceso de ósmosis
·       3-Plasmolisis y turgescencia en las células vegetales
·       4-Reconocimiento de glúcidos
·       5-La acción tampón en los líquidos naturales
·       6-Reconocimiento de lípidos

SEGUNDO TRIMESTRE:

7- Reconocimiento de prótidos
8-Reconocimiento de principios inmediatos de la leche
9-Estudios enzimáticos
10-Activación y desnaturalización de la enzima catalasa
12- Extracción de ADN de células animales
13-La fermentación láctica  (pendiente)
14- Separación de pigmentos vegetales mediante cromatografía en papel (pendiente)













-INFORME SOBRE LA PRÁCTICA Nº 1: EXISTENCIA DE SALES MINERALES EN LOS ESQUELETOS.

Con esta práctica se pretende reconocer la presencia de sales minerales en los esqueletos de algunos seres vivos,ya que participan estructuralmente en la concha,el caparazón, exoesqueletos externos de insectos,ya que les proporciona una función de sostén y protectora.

Como hemos estudiado las sales minerales están formadas por un ácido y una base,que cuando son atacadas químicamente por un ácido o base más fuerte,producen un desplazamiento en la que se produce una nueva sal.Ésta es totalmente soluble,como vamos a comprobar con el experimento .
Entoncés las cubiertas que sean atacadas por el ácido o la base,sufrirán una reacción química que liberará un gas,se presenciará un burbujeo que esfervecerá de la concha.La conclusión es que las conchas que no contengan una sal no sufrirán dicha reacción.

Aparte de esto,también se nos ha propuesto observar como el ácido ataca totalmente a las sales minerales en estructuras óseas,huesos,que contienen en su interior sales de calcio.Y observaremos como los  huesos al carecer de sales minerales,son bastante flexibles y elásticos como una goma.Esto se debe a la presencia de colágeno que es una proteina que se encuentra en los huesos y también en la piel y que proporciona flexibilidad al hueso.Pero ahora bien:

¿A qué se debe la flexibilidad de los huesos de los recién nacidos?¿A qué se debe la fragilidad de los huesos de los ancianos?
Así mediante una serie de prácticas comprobaremos experimentalmente las cuestiones y experiencias planteadas:




Procedimiento experimental:

Los materiales utilizados son bastante fáciles de conseguir,la mayoría son esqueletos de insectos,conchas,caparazones de crustáceos,en definitiva cualquier sustancia aparentemente rígido de cualquier ser vivo.Podemos recorgelos fundamentalmente de la playa y el campo; a excepción del ácido clorhídrico que podemos usarlo en el laboratorio del centro correspondiente.

Para ello el grupo llevará todos los materiales citados al laboratorio,siguiendo las normas de seguridad e higiene,se cogerá un papel de filtro para no ensuciar la mesa de cualquier sustancia.
Puedes coger un matraz erlermeyer e introducir las conchas en una disolución que previamente se ha preparado de ácido clorhídrico al 30% de concentración en masa.
Para ver la flexibilidad del hueso,podemos coger un cristalizador e introducir el hueso y dejarlo en base a una disolucion del 30% o incluso el 35-40% durante horas y días.
Al finalizar la práctica indicaremos en un papel que los recipientes contienen ácido y que son peligrosos,bajo los rotulos de :¡CUIDADO, HAY ÁCIDO!
Resultados de la práctica:

Así podemos explicar la reacción de desplazamiento en el que la sal,que se ataca por la acción del ácido forma otra nueva sal(un compuesto binario) que al ser soluble no vemos una vez que se forma,ya que se encuentra diluido.Vemos también como se libera en este caso dióxido de carbono.

De la misma manera afectará a los huesos que tienen carbonato de calcio,y quedarán totalmente flexibles;así podemos dar pie y explicar que  los huesos de los recien nacidos son practicamente cartilaginosos y al no tener carbonato de calcio y al tener colágeno son muy flexibles.En el caso contrario,los ancianos poseen cierta fragilidad en sus huesos y articulaciones,(como la ostioporosis),los huesos son muy frágiles,ya que con el tiempo van perdiendo la elasticidad que el colágeno les aporta.



CaCO3(s) + 2 HCl (aq) → CaCl2 (aq) + CO2 (g) + H2O (l)


Discusión:


Al principio a algunos alumnos le causó un cierto revuelo ver como el hueso era totalmente flexible,como si se tratara de una goma elástica;luego puede ser una experiencia interesante para realizar.La reacción tardó unos dias,pero al cabo de los minutos se observa rápidamente como tiene lugar y el efecto causado.(no tiene ningún inconveniente)







INFORME SOBRE LA PRÁCTICA Nº 2: PROCESO DE ÓSMOSIS

Antes de empezar a describir la práctica me gustaría recalcar de nuevo en consiste la ósmosis:
La osmosis como hemos estudiado este año es el paso de disolvente a través de una membrana semipermeable,desde un medio hipotónico a un medio hipertónico,es decir,de un medio de menor concentración a mayor concentración de soluto.El proceso continua hasta igualar las dos concentraciones.

 

Entonces con estas dos prácticas se pretende experimentar dicho proceso.
Para ello en la primera práctica pretenderemos introducir un huevo de gallina en ácido acético,el cual reaccionará con las sales de calcio y magnesio.Entoncés la cáscara irá “desapareciendo”,al disolverse totalmente quedará el huevo recubierto de una membrana semipermeable,que será suficiente para realizar nuestro experimento.Algunas de las proteínas como la álbumina pueden haberse coagulado,dependiendo de la cantidad de ácido e intensidad de éste(ph) y por consiguiente pueden desnaturalizarse.Finalmente lo que vamos a comprobar es como al cambiar el huevo,que tiene una concentración determinada,en el medio que se encuentra;en nuestro caso con agua destilada ,presenciaremos que el huevo por la acción de los fenómenos osmóticos se hinchará y  aumentará su tamaño,en relación a la cantidad de agua destilada que usemos.

La segunda práctica está basada en el mismo proceso,y en vez del huevo,utilizaremos una hoja de col lombarda,con la ayuda de una hoja de afeitar o una cuchilla o lámina metálica necesariamente fina,cortaremos una muestra para observarla al microscopio.
Ahora bien, ahora con una disolución de agua saturada de sal común(NaCl) y otra de agua destilada, pipetearemos sobre la muestra de la col y observaremos como ,los organulos celulares(vacuolas) y su citoplasma estarán sometidos a la acción del agua destilada y se hincharán y como al utilizar la disolución saturada hará que éstos disminuyan su tamaño.


1. Con la punta del bisturí realiza una incisión no demasiado profunda en la cara interior de un pétalo y con la punta de las pinzas rasgar y conseguir dos pequeños fragmentos de la epidermis.
2. Uno de los fragmentos se coloca sobre un portaobjeto al que previamente hemos añadido unas gotas de agua y luego se cubre con un cubreobjetos.
3. El segundo fragmento se coloca sobre un portaobjetos en el que previamente se han depositado unas gotas de solución salina saturada y luego se cubre con un cubreobjetos.



4. Observar ambas preparaciones al microscopio, primero con el objetivo de menor aumento para luego utilizar los de mayor aumento.

Procedimiento experimental:

En esta práctica necesitaremos un huevo de gallina,que podemos conseguir de cualquier fruteria o centro comercial.
Preparar una disolución de ácido acético de 50 cm3 en 150 cm3 de agua destilada,este ácido lo podemos conseguir de una botella de vinagre,pues el vinagre en su composición contiene ac. Acético.
Para ello podemos empezar la práctica poniendo un papel de filtro.
El siguiente paso será un matraz erlermeyer,y con la ayuda de un vaso de precipitados preparar la disolución disponiendo de 50cm3 de al ácido y enrasar hasta los 200cm3 de agua destilada.

Posteriormente introduciremos el huevo en la disolución y lentamente observaremos como tiene lugar el proceso de disolucion de las  sales;quedando el huevo con la membrana semipermeable.Una vez que lo tengamos en esta condiciones,lo cambiaremos de medio.
El agua destilada la podemos tomar prestada del laboratorio o bien ,el agua de plancha es destilada.
Así al cambiar de medio comprobaremos que ocurre…
La col lombarda la podemos comprar perfectamente en una fruteria.
Preparar una disolución saturada de cloruro sódico,sal común en agua.

Resultados:

Como hemos dicho lo que ocurrirá en la primera práctica será que el huevo al actuar como una membrana semipermeable que tiene una concentracion de sales determinada en su interior,al entrar en contacto con el agua destilada,ésta entrara en el huevo lentamente para igualar las concentraciones de soluto; el huevo puede hincharse demasiado e incluso reventar,asi podemos explicar de una manera sugerente lo que le ocurre a una célula cuando le cambiamos a un medio de menor concentración,en el que el que el disolvente entraría y podría llegar a “explotar” y así, la muerte celular(hemólisis).
El segundo también esta relacionado,pero en vez del huevo utilizamos una muestra de col lombarda al que pipetearemos o con un cuentagotas las dos disoluciones. Al mismo tiempo que visualizaremos en el microscopio el proceso de ósmosis que no afectará directamente a la célula,ya que las cúlas vegetales posees una pared celulósica,sino afectará al citoplasma y sus vacuolas(Si se produce la plasmolisis provocaría la rotura de la célula al desprenderse la membrana plasmática de la pared celular.)
De modo que la muestra de agua que posea mayor concentración que  la célula de la col terminará encogiendo el citoplasma y las vacuolas de ésta,liberandose agua para igualar las dos concentraciones.Al contrario al tener mayor concentración la col(que sea el medio hipertónico),el agua entrará y aumentará su citoplasma e incluso el tamaño de sus vacuolas,aumentando la célula de volumen(turgencia).



Discusión:

Puede resultar una práctica bastante interesante y casera ya que los materiales que utilizaremos no son totalmente peligrosos y pueden resultar fáciles de conseguir.
Así también podemos entender en que se basa la conservación de los alimentos,por ejemplo la salazón de pescados,ya que también se produce un fenómeno osmótico y someterlos a la salazón,va perdiendo agua y no se deteriora.Por ejemplo si cogemos un pescado en salazón y otro corriente y los dejamos a la intemperie,el primero tardará más en deteriorarse ya los microorganismos se deshidratan al tener una concentración osmótica más baja;mientras que en el sería un medio perfecto para la proliferación de éstos.

Esta práctica no presenta ningún inconveniente(practica de la lombarda) en sí,lo unico que hay que saber es como utilizar un microscopio,saber enfocar,ajustarlo,normas de seguridad…(veáse manejo y uso del microscopio anterior)

   















Como anteriormente ya hemos visto la práctica de la ósmosis, y esta práctica está basada en el mismo fundamento aplicado a las células vegetales junto con la lombarda, nos servirá como repaso. (Ver informe anterior)

A)   Se observará lo mismo ya que no cambia







INFORME Nº3: PLASMOLISIS Y TURGESCENCIA EN LAS CÉLULAS VEGETALES:


PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL:

Con la ayuda del bisturí y unas pinzas finas cortamos tres trocitos de epidermis de cebolla roja, de gladiolo rojo o de hibisco (revisar protocolo anterior), las tres valen, podemos conseguirlas en una frutería o floristería a buen precio.
Con la ayuda de un cuentagotas vertemos agua del grifo, agua destilada, y agua saturada de sal; como vemos con 3 concentraciones distintas.
Hacemos las preparaciones con cuidado de que no queden burbujas de aire ya que nos impedirán ver la muestra
Con los conceptos básicos de cómo utilizar el microscopio observamos lo que vemos.

RESULTADOS:

Como es de esperar el resultado tendría que ser el mismo que el anterior, que dependiendo de la concentración salina del medio,  la célula se hincha o se arruga ,pero claro esto sólo es válido en las células animales; porque como hemos aprendido, las células vegetales poseen una pared celular de celulosa que si que permitirá el proceso ,pero que la célula en sí no se verá tan afectada, no se deformará ,lo que si ocurrirá es que sus orgánulos celulares(vacuolas)y su citoplasma se hincharán o se arrugarán dependiendo de las concentraciones.
En el microscopio podremos observar como varía el tamaño de los orgánulos celulares en función del medio en el que se encuentren.
A continuación esperamos unos minutos y podremos observar lo anteriormente explicado.



    







                          (hibisco rojo)                                                     (gladiolos)        


                                                      

Vamos a empezar haciendo un estudio acerca de los glúcidos antes de comenzar: (referidos a la práctica)

Los glúcidos constituyen uno de los cuatro principios inmediatos orgánicos propios de los seres vivos. Su proporción en las plantas es mucho mayor que en los animales. En las plantas constituyen el principal componente orgánico, ya que se forman directamente en la fotosíntesis. Presentan una importante función energética para todos los seres vivos y también estructural,  por ejemplo, formando la pared celular de las plantas y de las bacterias.
Composición


Son biomoléculas formadas básicamente por carbono (C), hidrógeno (H) y oxígeno(O), en una proporción semejante a CnH2nOn. Siempre presentan un grupo carbonilo, es decir, un carbono unido a un oxígeno mediante un doble enlace, pudiendo ser un grupo aldehído o un grupo cetona. Los glúcidos pueden definirse como polihidroxialdehídos o polihidroxicetonas. Sin ser esencial en su composición, pueden contener nitrógeno, azufre o fósforo.

Clasificación




Según el número de carbonos que contengan:



* Monosacáridos: presentan de tres a ocho átomos de carbono.

* Oligosacáridos: formados por la unión de dos a diez monosacáridos. El más importante es el disacárido.

* Polisacáridos: formados por la unión de más de diez monosacáridos.




LOS MONOSACÁRIDOS


Formados por una única cadena polihidroxialdehídica o polihidroxicetónica. Se nombran añadiendo la terminación -osa al número de carbonos.


Enlaces N glucosídico y O-glucosídico


Monosacáridos de interés biológico


D-Glucosa: es el glúcido más abundante; polimerizado da lugar a polisacáridos de reserva y estructurales.


 D-Galactosa: aldohexosa; junto con la D-glucosa forma el disacárido lactosa.


 D-Manosa: aldohexosa.


 D-Fructosa: cetohexosa; es levógira y se halla en forma de b-D-fructofuranosa.

LOS DISACÁRIDOS



Formados por la unión de dos monosacáridos, que puede ser:



* Enlace monocarbonílico, entre el carbono anomérico del primer monosacárido (-osil) y un carbono cualquiera del segundo (-osa).

* Enlace dicarbonílico, entre los dos carbonos anoméricos de los dos monosacáridos; la terminación del primero es -osil y la del segundo -ósido.







Disacáridos de interés biológico son:

 la maltosa, con dos moléculas de D-glucopiranosa unidas por enlace a(1®4) que se obtiene del almidón y del glucógeno;
la celobiosa, con dos moléculas de D-glucopiranosa unidas por enlace b(1®4), se obtiene de la celulosa;
 la lactosa, b D-galactopiranosil-(1®4)-a D-glucopiranosa, se encuentra libre en la leche de mamíferos;
la sacarosa, a-D-glucopiranosl-(1®2)-b D-fructofuranosa, que se encuentra en la caña de azúcar y en la remolacha.









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celobios.gif (9518 bytes)
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LOS POLISACÁRIDOS:


Están formados por la unión de muchos monosacáridos mediante enlace O-glucosídico, con la consiguiente pérdida de una molécula de agua por enlace. Si son polímeros de un solo tipo de monosacárido se denominan homopolisacáridos, y si se componen de distintos monosacáridos, heteropolisacáridos.

Almidón(es el que nos interesa)

Polisacárido de reserva de los vegetales, formado por miles de glucosas. Se encuentra en semillas y en tubérculos, permitiendo a la planta obtener energía sin necesidad de luz. Está integrado por dos tipos de polímeros:
o Amilosa: polímero de maltosas unidas por enlace a (1®4). Estructura sin ramificar y helicoidal. Por hidrólisis ácida o por enzimas (a-amilasa en animales y b-amilasa en las semillas) da lugar a un polímero menor, la dextrina. Se separarán maltosas que por la acción de la enzima maltasa pasan a D-glucosa.
o Amilopectina: polímero de maltosas unidas por enlace a(1®4), con ramificaciones a(1®6), cada doce glucosas.



















PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL:
Objetivos: (3 experimentos)
1.    Identificación de glúcidos (azúcares reductores) e hidrólisis del enlace de un disacárido(sacarosa)
2.    Investigación de un polisacárido(Almidón)
MATERIALES:


  • Muestras de azúcares:
    • glucosa
    • maltosa
    • lactosa
    • sacarosa
    • almidón.
    • fructosa
    • galactosa
  • Tubos de ensayo, pinzas, gradilla, vaso para calentar, mechero bunsen.
  • Reactivo de Fehling A y Fehling B
  • Lugol
  • HCl diluido

Reacciones que van a realizarse:
1. Reacción de Fehling:
  • Tomar la muestra que se quiera analizar (normalmente una cantidad de 3 cm3).
  • Añadir 1 ml de Fehling A y 1 ml de Fehling B. El líquido del tubo de ensayo adquirirá un fuerte color azul.
  • Calentar el tubo en un mechero de Laboratorio.
  • La reacción será positiva si la muestra se vuelve de color rojo-ladrillo.
  • La reacción será negativa si la muestra queda azul, o cambia a un tono azul-verdoso.

¿CÓMO PREPARAR LAS DISOLUCIONES?
En los tres casos tenemos que preparar disoluciones al 5%, para ello cogemos una balanza, la calibramos y cogemos un vidrio de reloj para pesar la cantidad de soluto:
En nuestro caso el vidrio reloj pesa 20.35g y la cantidad de soluto que hay que preparar gira en torno al 0.15g, así que calibraremos la balanza en torno a 20.5 g.






Una vez pesadas disolvemos el resto el 95% en agua destilada.


RESULTADOS: (fundamentos ver hoja de la práctica)
 Se basa en el carácter reductor de los monosacáridos y de la mayoría de los disacáridos (excepto la sacarosa). Si el glúcido que se investiga es reductor, se oxidará dando lugar a la reducción del sulfato de cobre (II), de color azul, a óxido de cobre (I), de color rojo-anaranjado.
-En cambio la sacarosa es un disacárido y hay producir su hidrólisis como vimos anteriormente en glucosa y fructosa ,que si tienen poder reductor;mediante:

1.  3ml de solución de sacarosa y 10 gotas de ClH diluido.
2. Calentar a la llama del mechero durante unos 5-6 minutos.
3. Dejar enfriar.
4. Neutralizar añadiendo 3ml de solución alcalina.

CUADRO DE AZÚCARES REDUCTORES:

Azúcares

Color original
Color resultante
  Reacción
Sacarosa       *                 1%       
Azul
rojo
+
Glucosa                           1%          
Azul
rojo
+
Lactosa                           1%         
Azul
rojo
+
Maltosa                           1%          
Azul
rojo
+
Almidón                          1%         
Azul
azul
-
Galactosa                        1%          
Azul
rojo
+

*(La sacarosa dará negativo al principio ya que no posee carbonos anoméricos libres(no reductor), pero una vez que se produzca la hidrólisis sí que es reductor y da positivo.

OBSERVACIONES:
La sacarosa fue la que cambió primero, empezó desde el fondo.
La lactosa primero fue roja en el fondo y lo demás morado. Al final se hizo uniforme.
La glucosa, maltosa, galactosa cambiaron desde arriba hacia abajo.











 Reacción del Lugol:
 Este método se usa para identificar polisacáridos. El almidón en contacto con unas gotas de Reactivo de Lugol (disolución de yodo y yoduro potásico) toma un color azul-violeta característico.
  • Poner en un tubo de ensayo unos 3 m3 del glúcido a investigar.
  • Añadir tres gotas de lugol.
  • Si la disolución del tubo de ensayo se torna de color azul-violeta, la reacción es positiva.
La coloración producida por el Lugol se debe a que el yodo se introduce entre las espiras de la molécula de almidón.
No es por tanto, una verdadera reacción química, sino que se forma un compuesto de inclusión que modifica las propiedades físicas de esta molécula, apareciendo la coloración azul violeta.















DISCUSIÓN:

Al comenzar la práctica había algunos problemas en cuanto al tiempo, por ejemplo en la sacarosa sino se espera el tiempo necesario para que se producto la hidrólisis (el resultado es nulo); más o menos sobre cinco minutos.

Al  poner las muestras de los azúcares reductores en el tubo de ensayo directamente al fuego, se proyectaban debido su elevadas temperaturas; hay que tener en cuenta que no se caliente demasiado (sino poner al baño maría, ya que es más seguro).
La reacción del lugol no causó ningún problema ya que el yodo se fija en la molécula de la molécula de amilosa y no tiene ningún inconveniente.









LA ACCIÓN TAMPÓN EN LOS LÍQUIDOS NATURALES:
Material necesario
Dos tubos de ensayo
Solución de ácido clorhídrico al 0,1 por 100.Papel indicador de pH.

Procedimiento
1. Tomar dos tubos de ensayo. En uno poner 5cm3 aproximadamente se saliva y en el otro, 5 cm3 de agua corriente. Anotar en un  papel los valores de pH de ambos medios, que suele ser en ambos casos de 7.
2. Añadir luego a cada tubo 1cm3 de HMC al 0,1 por 100 y volver a observar el pH.
¿Qué líquido ha variado más lentamente su pH? ¿A qué sustancias disueltas se debe?
Resultados








INFORME SOBRE LA PRÁCTICA Nº 5:



RESUMEN Y FUNDAMENTO:
Con esta práctica se pretende comprobar la acción tampón de los liquidos amortiguadores, asi también podemos explicar que en las células existen soluciones amortiguadoras que regulan la variación del pH;esto es así ya que los procesos químicos que se dan en la célula producen sustancias que alteran el pH del medio.

Así, por ejemplo, el ión bicarbonato (HCO3-) actúa como tampón en los medios
Orgánicos. Si el pH es ácido habrá un exceso de iones H3O+ . Estos serán captados por el ión HCO-3 que se transformará en H2CO3 y H2O, con lo que el pH aumentará. El H2CO3, a su vez, se descompondrá en CO2 y H2O. El proceso se desarrolla a la inversa si hay pocos iones H3O+ . El ión bicarbonato actúa como un tampón eficaz para valores de pH en las proximidades de 7, que es el pH de la sangre. En los medios intracelulares el tampón más frecuente es el ión fosfato (H2PO4-).grandes variaciones.
De manera más resumida lo que pretendemos comprobar es la acción tampón pero aplicada a líquidos naturales como la saliva.

PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL:
Tomamos dos tubos de ensayo y echamos 5cm3 de saliva y 5cm3 de agua corriente, teniendo la misma cantidad en volumen.
Una vez anotados los valores de pH, añadimos la misma cantidad de ácido a ambos tubos de ensayo, que será de 1cm3 al 0,1 por 100, y volveremos a observar el pH.

RESULTADOS:

Una vez comprobadas los valores con la cinta de pH que más o menos tienen un pH de 7(neutro).Pasamos al estudio de composición química de ambas sustancias.
Aunque la saliva tiene proteínas como la amilasa y la mucina, que juegan un papel importante en el proceso de deglución, la composición de la saliva es parecida a la del plasma, aunque hay menos Na+ y mas K+ y menos Cl- y mas HCO3-.El pH de la saliva es casi neutro y debido a su contenido de HCO3- tiene propiedades neutralizantes de los ácidos, de manera que juega un importante papel en la higiene de la boca.
Así podemos explicar que a partir de la acción de sales que tiene, neutraliza al ácido, y cambiará más lentamente el pH.
El agua al no tener un sistema de tampón, que regule la concentración el pH varia de manera radical
Entonces podemos concluir con que el pH de la saliva habrá variado lentamente o habrá variado menos, que el del agua y efectivamente es así, ya que al volver a medir el pH, el del agua era de 5  y  de la saliva de 6.5;al mismo tiempo que sincronizamos el tiempo y sale una media de 4.5 s.

DISCUSIÓN:

Podemos saber que la saliva tiene propiedades neutralizantes en la boca y juega un papel importante en la higiene bucal.

El único inconveniente que presenta esta práctica es que hay que ser lo suficientemente preciso a la hora de tomar las muestras de saliva y de agua, ya que de no ser así el experimento puede resultar nulo o verse afectado por el ácido ya que la concentración es distinta…y volver a repetirlo de nuevo hasta que salga de nuevo.

Como me parece interesante  el tema de las propiedades neutralizantes y el papel que juega en la higiene bucal, adjunto una imagen señalando las diferentes glándulas salivales:












MARCO TEÓRICO (un poco acerca de los lípidos…)

Los lípidos son moléculas constituidas por C, H y en menor proporción, Oxigeno;

también pueden tener en su estructura P y N. Son hidrófobos (insolubles en agua y
en otros disolventes polares), sin embargo, son solubles en solventes apolares como
acetona, éter, benceno, etc.


FUNCIONES DE LOS LIPIDOS:
Reserva de energía

Aislantes térmicos

Protección

Estructural


Los lípidos más abundantes son los que posen ácidos grasos, es decir, los lípidos
saponificables. De ellos los triglicéridos (grasas y aceites) son los más característicos. En los triglicéridos una molécula de glicerina se encuentra esterificada por tres moléculas de ácidos grasos. La reacción de formación será la siguiente:

GLICERINA + 3 ACIDOS GRASOàÉSTER+ AGUA
(Alcohol)                                         (Triglicérido)

La característica común a todos los lípidos es que son insolubles en agua y solubles
en disolventes orgánicos como la gasolina, benceno, xilol, cloroformo...
Cuando se mezcla agua y aceite y se agita la mezcla se forma una emulsión
transitoria. Esto significa que si se deja la “mezcla” reposar unos instantes, las
gotas de aceite, de menor densidad, suben y se unen entre sí, formándose dos  capas, la superior de aceite y la inferior de agua comprobándose su insolubilidad enagua.
En cuanto a su tinción, los lípidos se colorean selectivamente de rojo -anaranjado
con el colorante Sudán III



Observar los resultados: se verá como el aceite se ha disuelto en el éter y, en
cambio no lo hace en el agua y el aceite debido a su menor densidad.

RESULTADOS Y DISCUSIONES

1.¿Qué son los jabones?
El jabón es la sal (generalmente de sodio) de varios ácidos grasos provenientes del sebo y grasas animales incluyendo aceite de coco, palma, semilla de algodón y otros en la formulación para darle alguna propiedad extra en función del tipo de aceite. El jabón es soluble en agua y la solución tiene excelentes propiedades limpiadoras.
De forma resumida podemos decir que un jabón es la sal de un ácido graso.
2 .¿Cómo se pueden obtener jabones?
En la actualidad hay dos métodos de obtención del jabón, ambos basados en la saponificación.

-Primer método:
En el primer método se produce la saponificación directamente sobre la grasa, se

hace reaccionar el álcali con la grasa, y se obtiene el jabón y glicerina. Este método tiene como desventaja que es más difícil la separación de la glicerina y el jabón.

-Segundo método:
En este método primero se produce la ruptura química de la grasa, y se obtiene la

glicerina y los ácidos grasos; éstos se separan fácilmente. Luego se produce la sal
del ácido graso y el alcalino.
3. ¿Por qué en la saponificación la glicerina aparece en la fase acuosa?
Porque la glicerina no es liposoluble. Tiene que ver con su solubilidad
Ya que es un producto secundario, lo importante es el jabón.
4. ¿Qué enzima logra en el aparato digestivo la hidrólisis de agua?
Es la lipasa, es una enzima ubicua que se usa en el organismo para disgregar las grasas de los alimentos de manera que se puedan absorber. Su función principal es catalizar la hidrólisis de triacil-glicerol a glicerol. Las lipasas se encuentran en gran variedad de seres vivos.
5. Indica lo que ocurre con la mezcla aceite – Sudan III y aceite – Tinta y
explica a que se debe la diferencia entre ambos resultados.

El sudan III – aceite presenta una coloración rojo vino:
Este resultado se debe a que el aceite y las grasas son un grupo de compuestos

orgánicos existentes en la naturaleza que consiste en ésteres formados por tres
moléculas de ácidos grasos y una molécula del alcohol glicerina. De tal manera que
el Sudan III, lo reconoce y lo tiñe.

Tinta china – aceite presenta una coloración rojo sangre:
Las diferencias entre ambos es que en el sudan III con el aceite todo el aceite

aparece teñido y en la tinta china aceite este se fue poco a poco destiñendo
suavemente pero no del todo.

6. ¿Qué ocurre con la emulsión de agua en aceite transcurridos unos minutos de reposo? ¿Y con la del benceno y el aceite? ¿A qué se deben las diferencias observadas entre ambas emulsiones?
Al pasar unos minutos de reposo notamos que el aceite sube y agua se encuentran
abajo. El agua es más densa que el aceite. 














CONCLUSIONES Y RESULTADOS:


En el experimento de solubilidad de los lípidos, se podrá observar que el
aceite se ha disuelto en el éter y no en el agua ya que este subirá debido a su
menor densidad al separarse el almidón.

Los lípidos son insolubles en agua. Cuando se agitan fuertemente en ella se
dividen  en pequeñísimas gotas formando una emulsión de aspecto lechoso,
que es transitoria, pues desaparece en reposo por reagrupación de las gotitas
de grasa en una capa que, por su menor densidad, se sitúa sobre el agua.

Por el contrario, las grasas son solubles en disolventes orgánicos, como el
éter, cloroformo, acetona, benceno, etc.


APLICACIÓN COMO DISCUSIÓN:
Por ejemplo en el campo de la Ingeniería Agroindustrial, el saber cómo reconocer
cualitativamente los lípidos es de importancia; ya que reconocerlos es básico
para desarrollar diferentes análisis en grasas y aceites.
En este informe de laboratorio está contenido todo lo referente a este tema; marco
teórico, descripción de la práctica, conclusiones.








 INTRODUCCIÓN

En esta práctica desarrollamos el tema de Reconocimiento de
proteínas y para ello , diferentes formas de reconocer la presencia de
las proteínas en una sustancia ( clara de huevo), las reacciones a utilizar, etc.


Este informe encompleto también contiene la experiencia en el laboratorio,
imágenes de ella y algunos resultados que se pedía en la realización de
informe y que se requería saber en cada experimentación.

UN POCO ACERCA DE LAS PROTEÍNAS:

PROTEINAS:
Son biomoléculas de gran tamaño y peso molecular formadas por C, H, O, y N.
Son macromoléculas o polímeros de aminoácidos.
AMINOÁCIDOS:
Son moléculas orgánicas que presentan grupo amino (- NH2)y un grupo
nacido carboxilico (- COOH).
En disolución los aminoácidos forman iones dobles denominados (Zwitteriones)
debido a sus grupos acido y base; además, un aminoácido, dependiendo del
PH de la solución, puede comportarse como acido o como base por esta razón
se les denomina anfótera.


ESTRUCTURA DE LAS PROTEÍNAS:


Estructura primaria: 
Es la secuencia de aminoácidos de la proteína (en forma
lineal).

Estructura secundaria:
 La estructura secundaria es la disposición de la
secuencia de aminoácidos en el espacio. La a (alfa)-hélice Esta estructura se
forma al enrollarse helicoidalmente sobre sí misma la estructura primaria.
La conformación beta. En esta disposición los aminoácidos no forman una
hélice sino una cadena en forma de zigzag.

Estructura terciaria: 
Informa sobre la disposición de la estructura secundaria
de un polipéptido al plegarse sobre sí misma originando una conformación
globular. Aparecen varios tipos de enlaces:(el puente disulfuro, los puentes de
hidrógeno,los puentes eléctricos,las interacciones hidrófobas)

Estructura cuaternaria: 
Esta estructura informa de la unión, mediante enlaces
débiles (no covalentes) de varias cadenas polipeptídicas con estructura terciaria, para formar un complejo proteico. Cada una de estas cadenas polipeptídicas recibe el nombre de protómero.







REACCIONES DE RECONOCIMIENTO




Coagulación de Proteínas


Las proteínas, debido al gran tamaño de sus moléculas, forman con el agua soluciones coloidales. Estas soluciones pueden precipitar con formación de coágulos al ser calentadas a temperaturas superiores a los 70:C o al ser tratadas con soluciones salinas, ácidos, alcohol, etc.

La coagulación de las proteínas es un proceso irreversible y se debe a su desnaturalización por los agentes indicados, que al actuar sobre la proteína la desordenan por la destrucción de su estructura terciaria y cuaternaria




Técnica

Para ver la coagulación de las proteínas se puede utilizar clara de huevo, para conseguir más volumen puede prepararse para toda la clase una dilución de clara de huevo en agua, de forma que quede una mezcla aún espesa.

  1. Colocar en un tubo de ensayo una pequeña cantidad de clara de huevo.
  2. Añadir 5 gotas de ácido acético y calentar el tubo a la llama del mechero.




Reacciones coloreadas

Reacción Xantoproteica
El objetivo de esta práctica consiste en reconocer la presencia de proteínas en la clara de 
huevo. Para ello utilizaremos la prueba Xantoproteica.
Fundamento teórico
En el caso de haber proteínas en la clara de huevo, al añadir HNO3 y calentarlo, ésta 
debe tomar un color amarillo suave, y al añadir NH3 deberá tomar un tono anaranjado.
Experimentación
Tenemos clara de huevo en un vaso de precipitado. Tomamos una muestra con una 
jeringuilla y la vertemos en un tubo de ensayo. Añadimos el HNO3 y calentamos:
Resultados
Dado que los resultados de la prueba Xantoproteica dan positivos, queda demostrada la 
presencia de proteínas en la clara de huevo. El hecho de que la clara solidifique en 
contacto con el HNO3 es debido a que al cambiar el pH de la disolución, las proteínas 
que en ella hay se denaturalizan y se vuelven insolubles.



Es debida a la formación de un compuesto aromático nitrado de color amarillo, cuando las proteínas son tratadas con ácido nítrico concentrado. La prueba da resultado positivo en aquellas proteínas con aminoácidos portadores de grupos bencénicos, especialmente en presencia de tirosina. Si una vez realizada la prueba se neutraliza con un álcali vira a un color anaranjado oscuro.


 
Tecnicas

  1. Poner en el tubo de ensayo de 2 a 3 cc. de solución problema (clara de huevo ).
  2. Añadir 1 cc. de HNO3 concentrado.
  3. Calentar al baño maría a 100: C..
  4. Enfriar en agua fría
  5. Añadir gota a gota una disolución de sosa al 40%.


Reacción de Biuret

La producen los péptidos y las proteínas, pero no los aminoácidos, ya que se debe a la presencia del enlace peptídico (- CO- NH -)que se destruye al liberarse los aminoácidos.
Cuando una proteína se pone en contacto con un álcali concentrado, se forma una sustancia compleja denominada Biuret, de fórmula:

que en contacto con una solución de sulfato cúprico diluida, da una coloración violeta característica.


Técnica


  1. Tomar un tubo de ensayo y poner unos 3 cc. de albúmina de huevo.
  2. Añadir 2cc. de solución de hidróxido sódico al 20%.
  3. A continuación 4 ó 5 gotas de solución de sulfato cúprico diluida al 1%.
  4. Debe aparecer una coloración violeta-rosácea característica.

 -otra reacción interesante:

Reacción de los aminoácidos azufrados


Se pone de manifiesto por la formación de un precipitado negruzco de sulfuro de plomo. Se basa esta reacción en la separación mediante un álcali, del azufre de los aminoácidos, el cual al reaccionar con una solución de acetato de plomo, forma el sulfuro de plomo.

Técnica

  1. Poner en el tubo de ensayo de 2 a 3 cc. de albúmina de huevo (clara de huevo).
  2. Añadir 2 cc. de solución de hidróxido sódico al 20%.
  3. Añadir 10 gotas de solución de acetato de plomo al 5%.
  4. Calentar el tubo hasta ebullición.
  5. Si se forma un precipitado de color negruzco nos indica que se ha formado sulfuro de plomo, utilizándose el azufre de los aminoácidos, lo que nos sirve para identificar proteínas que tienen en su composición aminoácidos con azufre.














CUESTIONES DE LA PRÁCTICA:


¿Cómo se manifiesta la desnaturalización de la clara de
huevo?
La desnaturalización de proteínas se da en la clara de huevo, que son en
gran parte albúminas en agua. En los huevos frescos, la clara es transparente y
líquida; pero al cocinarse se vuelve opaca y blanca, formando una masa sólida
intercomunicada.
 Esa misma desnaturalización puede producirse a través de
una desnaturalización química, por ejemplo volcándola en un recipiente con
acetona, variacines de pH consiguiendo así, la desnaturalización irreversible de la proteína y pérdida de la solubilidad, pero también pueden ser causadas por la alta temperatura.

¿Cuál de los tres agentes utilizados tiene mayor poder de
desnaturalización?

El efecto de la temperatura, cuando la temperatura es elevada aumenta la
energía cinética de las moléculas con lo que se desorganiza la envoltura
acuosa de las proteínas y, se desnaturalizan.

¿Cómo podríamos saber que una sustancia desconocida
es una proteína?

Para saber si una sustancia desconocida, es una proteína se utiliza el “Reactivo de Biuret”, es aquel que detecta la presencia de proteínas, péptidos cortos y otros compuestos con dos o más enlaces peptídicos en sustancias de
composición desconocida.
Está hecho de hidróxido potásico (KOH) y sulfato cúprico (CuSO4), junto con(KNaC4O6·4H2O). El reactivo, de color azul, cambia a violeta en presencia deproteínas, y a rosa cuando se combina con polipéptidos de cadena corta. El Hidróxido de Potasio no participa en la reacción, pero proporciona el medioalcalino necesario para que tenga lugar.

¿Qué coloración da la reacción del Biuret?
La coloración que presenta es el color violeta, indicando la presencia de
proteínas.

¿Una proteína coagulada podría dar la reacción de Biuret?

Las proteínas, debido al gran tamaño de sus moléculas, forman con el agua
soluciones coloidales. Estas soluciones pueden precipitar con formación de
coágulos al ser calentadas a temperaturas superiores a los 70 ªC o al ser
tratadas con soluciones salinas, ácidos, alcohol, etc.
Si una proteína coagulada podría dar la reacción de Biuret, porque el reactivo
reacciona con cualquier proteína, liquida o sólida, por ejemplo cuando haces
una cuantificación de proteínas en suero (liquida) o cuando haces una prueba
cualitativa en huevos, carne, papas, etc.

Si se realiza la reacción del Biuret sobre un aminoácido
como la Glicina ¿es positiva o negativa? ¿Por qué?

La glicina no reaccionó con el reactivo de Biuret porque está en forma libre y no
hay enlaces peptídicos con los que pueda reaccionar este reactivo. De esta
manera, la glicina dio una prueba negativa. Además en la reacción
xantoprotéica da negativo porque carece de grupos aromáticos.


CONCLUSIONES DE LA PRÁCTICA.


Las proteínas constituyen una de las moléculas más importantes en el
organismo ya que cumplen muchas funciones

Las proteínas están constituidas por aminoácidos por los cuales los
métodos se basan en el reconocimiento de los aminoácidos

Al realizar las diferentes pruebas con la albúmina se pudo comprobar
experimentalmente que se trata de una proteína

Las proteínas son sensibles con las sales metálicas pesadas (mercurio
,cobre ,plomo) formando precipitados

En las reacciones donde se obtuvo precipitación se debió a un cambio
en el estado físico d
e la proteína, mientras que en la coagulación se ha
producido un cambio en el estado físico y en la estructura química por
eso es irreversible.










INTRODUCCIÓN:

Como sabemos, podemos agrupar los principios inmediatos que constituyen la materia viva en orgánicos e inorgánicos. A su vez, los orgánicos pueden quedar distribuidos en los siguientes grupos: glúcidos, prótidos, lípidos y ácidos nucleicos. Entre los principios orgánicos, abundan más los tres primeros que hemos citado, ya que los ácidos nucleicos nunca tienen una función de reserva y, cuando la tienen estructural ésta se reduce a pequeñas estructuras celulares (ribosomas).
En esta práctica vamos a reconocer -mediante reacciones químicas y de tinción específicas para cada una de estas sustancias- monosacáridos (en nuestro caso, glucosa), sacarosa y almidón, proteínas (caseína de la leche) y lípidos en la leche.




COMPOSICIÓN DE LA LECHE:





PROCEDIMIENTO

A) Desnaturalización o coagulación de proteínas lácteas.

FUNDAMENTO
  
 Como ya hemos visto en prácticas anteriores, la coagulación de las proteínas se produce por la desnaturalización de éstas, que son provocadas por varios factores tanto químicos como físicos como: el aumento de temperatura, variaciones de presión y de pH o cambios en la concentración salina. La desnaturalización es  la alteración de la conformación nativa de las proteínas por alguno de los factores citados, provocando la rotura de los enlaces de la estructura cuaternaria, terciaria y secundaria.

TÉCNICA
  • Hacer una serie de cuatro tubos de ensayo y numerarlos.
  • Al tubo nº 1 se le añade 2ml de leche y 2ml de HCl puro.
  • Al tubo nº 2 se le añade igual cantidad de leche y 2ml de una disolución concentrada de NaCl.
  • Al tubo nº 3 añadir 2ml de leche y 2ml de NaOH al 20%.
  • Al tubo nº 4 se le añade 2ml de leche y después se le calienta levemente.

RESULTADOS OBTENIDOS

En el tubo nº 1 podemos observar una fase superior de leche sin coagular, y una fase inferior donde la leche si que se ha coagulado, las proteínas se han precipitado, por tanto en esa fase si se ha producido la desnaturalización.
En el tubo nº 2 no se ha producido la desnaturalización de las proteínas lácteas puesto que no se ha coagulado la leche.
En el tubo nº 3 ha ocurrido lo mismo que en el tubo nº 1.
En el tubo nº 4 tampoco se ha producido la desnaturalización por el hecho de que no se ha coagulado la leche.



B) Reconocimiento de grasas en la leche.


FUNDAMENTO
     Las grasas se colorean de rojo-anaranjado con el colorante Sudán III. Ésto se debe a que el Sudán III es un colorante lipofilo (soluble en grasas). Por esa afinidad a los ácidos grasos hace que la mezcla de éstos con el colorante se ponga de color rojo, mezclándose totalmente y  convirtiéndose en un colorante específico utilizado para revelar la presencia de grasas.

TÉCNICA

  • Colocar 2ml de leche en un tubo de ensayo, añadir 10ml de agua y unas gotas de Sudán III y agitar fuertemente. 
  • Observar que se tiñe todo de rosa. 
  • Añadir 1ml de HCl al 50% y calentarlo. Observar los resultados obtenidos.



RESULTADOS OBTENIDOS

  • a) Fase superior, de color rosa, formada por las grasas teñidas por el Sudán III, que es un colorante específico de grasas como hemos señalado anteriormente.
  • b) Fase intermedia, con el agua y ciertos compuestos solubles, como la lactosa y algunas proteínas disueltas (lactoalbúmina y lactoglobulina).
  • c) Fase inferior, con las proteínas coaguladas y precipitadas (ya señalado antes, se ha producido desnaturalización al calentar la leche.    
  • C) Reconocimiento de glúcidos en la leche.

FUNDAMENTO

   Entre la gran mayoría de los azúcares y en especial ,los monosacáridos y  los disacáridos poseen un poder reductor, gracias al grupo carbonilo que tienen en su molécula. El poder reductor consiste en la capacidad de un átomo o de un ion de ceder uno o más electrones a otro átomo o ion, que quedará reducido. Este carácter reductor puede ponerse de manifiesto por medio del reactivo de Fehling, a una reacción redox llevada a cabo entre ellos y el sulfato de Cobre (II). Las soluciones de esta sal tienen color azul. Tras la reacción con el glúcido reductor se forma óxido de Cobre (I) de color rojo. Asi mismo, el cambio de color indica que se ha producido la citada reacción y que, por lo tanto, el glúcido presente es reductor. El hecho de tener el poder reductor, se debe a el OH del carbono carbonilo esté libre, por lo que reacciona con el sulfato de cobre del Fehling (azul y soluble) reduciéndolo a óxido de cobre (rojo anaranjado y menos soluble). 

TÉCNICA

  • Se recoge aparte con una pipeta Pasteur o cuentagotas la fase soluble de la prueba anteior, se filtra  y se añade 1ml del filtrado a un tubo de ensayo.
  • A este tubo se le agrega 1ml del reactivo de Fehling (o de Benedict) y se le calienta durante unos minutos.
  • Si la prueba es positiva (hay presencia de un glúcido reductor, en este caso la lactosa) aparecerá un precipitado de óxido de cobre, de color rojo.

RESULTADOS OBTENIDOS


       Pese a que lo calentamos durante unos minutos, no observamos el cambio de color, se quedaba azul. Suponemos que se debe a que no lo dejamos el tiempo suficiente.

D) Reconocimiento de proteínas en la leche: Prueba xantoproteica.




FUNDAMENTO



En nuestro experimento utilizaremos la caseína, proteína presente en la leche y que contiene aminoácidos aromáticos.


TÉCNICA

Recoger con una espátula el precipitado de la leche coagulada (caseína), llevarlo a un trozo de papel     de filtro y secarlo.
-Poner en un tubo de ensayo una pequeña porción del precipitado seco, añadir unas gotas de ácido nítrico puro y calentar ligeramente.

RESULTADOS OBTENIDOS

 Como pudimos comprobar, cuando al precipitado de la leche coagulada que era la caseína, le añadimos ácido nítrico y lo calentamos vimos como adoptaba una coloración amarilla, debido a, como ya hemos dicho anteriormente, a la nitración de los aminoácidos aromáticos de la caseína.




ESTUDIOS ENZIMÁTICOS

1) HIDRÓLISIS ENZIMÁTICA DEL ALMIDÓN POR LA SALIVA:

FUNDAMENTO


A continuación vamos a explicar el fundamento del procedimiento experimenta, el lugol al introducirse en la molécula de almidón ; esto se detecta por la coloración violeta-azulada que toma la mezcla. El almidón es un polisacárido que se encuentra en los amiloplastos de las células vegetales, sobre todo en las semillas, las raíces y los tallos. También aparece en algunos protistas. Realmente esta compuesto por dos tipos de moléculas: la amilosa, siendo ésta a la que se pega el lugol en frío, por lo que es la que se tiñe de azul-violeta; y por la amilopectina. Realmente no se trata de una reacción química sino de una absorción.


La saliva contiene una enzima hidrolasa que tiene la función de digerir el glucógeno y el almidón para formar azúcares simples. Se produce principalmente en las glándulas salivares, se trata de la enzima amilasa. Cuando el almidón es degradado, se obitiene glucosa, dextrosa y fragmentos de otros azucares.


TÉCNICA

Primero se hace un tubo patrón con 2ml de una disolución de almidón al 2 % y unas gotas de disolución de yodo (lugol). Observar el resultado. Después se calienta suavemente el tubo hasta que la mezcla pierda el color. Dejar enfriar el tubo bajo el agua del grifo y esperar unos minutos. Anotar lo sucedido.

Colocar en un segundo tubo 2ml de la disolución de almidón y una cierta cantidad de saliva, mezclar bien la saliva con la disolución y calentar muy suavemente durante unos segundos. Añadir unas gotas de lugol. Anotar los resultados y dar una explicación a lo ocurrido.


RESULTADOS OBTENIDOS:

Al añadirle lugol al almidón pudimos observar como  adquiría una coloración azul-violeta por la absorción entre la amilosa y el lugol. Al calentarlo perdía el color ya que la absorción solo se produce en frío. Por tanto cuando luego lo dejamos enfriar, volvió esa coloración características del principio.Al mezclar el almidón con la saliva, la enzima amilasa es la encargada de degradarlo. Si luego le añadimos lugol seguimos observando esa coloración azul-violeta del experimento anterior puesto que se ha vuelto a producir la absorción entre el lugol y la amilosa del almidón.



    • 2) RECONOCIMIENTO DE LA CATALASA EN TEJIDOS:
    FUNDAMENTO
       La catalasa, es una enzima que se encuentra en tejidos vegetales (patata, zanahoria, lechuga, ect.) como en tejidos animales (carne, pescado, etc.) produciendo la siguiente reacciñon química: 


    H2O2 (agua oxigenada) -----> H2O + 1/2O2 (gaseoso). 
    La enzima descompone el peróxido de hidrógeno o agua oxigenada en agua y oxígeno gaseoso, que se desprenderá en forma de burbujas en un medio acuoso.
    TÉCNICA

    • Poner e varios tubos de ensayo previamente numerados distintos tejidos (más o menos el mismo peso de cada tejido).
    • Añadir 5ml de agua oxigenada a cada tubo y anotar lo que sucede.
    • Explicar lo ocurrido y ordenar los tejidos según su actividad.
    • Repetir el proceso anterior, pero hervir antes los tejidos durante diez minutos. 
    • Exoplicar los resultados obtenidos.

    RESULTADOS OBTENIDO:
    Cuando añadimos peróxido de hidrógeno (agua oxigenada) observamos que efectivamente burbujeaban todos, unos menos que otros. Esto se debe a que todos esos tejidos contienen la enzima catalasa y al añadirle agua oxigenada se produce la reacción ya citada anteriormente, obteniéndose agua y oxígeno gaseoso que es el responsable de la aparición de esas burbujas, debido a que se desprende de esa manera.
     Según su actividad ordenaremos a los tejidos de nuestro experimento de mayor a menos actividad:

    ....>hígado, zanahoria ,pimiento,habichuelas verdes, apio



    3) ACTIVIDAD CATALÍTICA DE LA CATALASA:

    FUNDAMENTO & TÉCNICA

    En un tubo de ensayo se coloca un trozo de hígado (o 1ml de extracto de hígado) y 10ml de agua oxigenada. Se cierra el tubo con un tapón, que se deja algo flojo para el escape de los gases producidos en la reacción, en cuyo centro exista un orificio por el cual se pueda introducir un termómetro. Así, hemos hecho un calorímetro.
    Se anota la temperatura ambiente, que se toma como temperatura inicial de la reacción, y después se va anotando las variaciones de temperatura que se producen en el interior del calorímetro cada treinta segundos durante un período de cinco minutos. Hacer la gráfica de la reacción y explicar los resultados.

    (catalasa)

























    INTRODUCCIÓN A LA PRÁCTICA:


    Durante los procesos biológicos y el constante intercambio con el medio, segeneran especies químicas conocidas como radicales libres, se caracterizanpor presentar un electrón desapareado y por ser muy reactivas. Los radicales resultan de gran interés las especies reactivas derivadas del oxigeno (EROS)debido a la estructura biradicalica de esta moléculay al gran numero deprocesos que las generan y en los que puede verse involucradas.

    Los principales eros son anión superoxido (O2), radical hidroxilo (OH), oxigenosinglete y el peróxido de hidrogeno (H2O2). Estas especies radicalicas estánimplicadas en el daño celular de forma tal que la agresiones oxidantes puedendirigirse hacia la carcinogénesis, enfermedades inflamatorias, senectud celulary enfermedades neurodegenerativas entre otros proceso patológicos.

    En el organismo existe un sistema de protección antioxidante formado porenzimas y compuestos de bajo peso molecular. Una de las enzimas queintervienen en la protección y, en el mantenimiento del balanceoxidante/antioxidante es la catalasa (CAT).

    La catalasa se encuentra en las células de tejidos animales y vegetales. Lafunción en los tejidos es necesaria por que durante el metabolismo celular, seforma una molécula toxica que es el PER-OXIDO DE HIDROGENO,H2O2(agua oxigenada), la cata-lasa, lo descompone en agua y en oxigeno.

    La reacción de la catalasa sobre el H2O2, es la siguiente,

                2H2O2  -------------->    2H2O+
                                         CATALASA



    Su función es proteger a las células del efecto del peróxido de hidrogeno (agua oxigenada). 


    Fue una de las primeras enzimas purificadas más suficientes con una velocidad de 200000 transformaciones/segundo/subunidad.
    La proteína es un tratamiento formado por cuatro subunidades idénticas. Cada monómero contiene un grupo prostético HEMO en el centro activo. En algunasespecies también contienen una molécula de NADP por subunidad cuyafunción es proteger a la enzima de la oxidación por su sustrato H2O2.

    Es una enzima tetrametrica, con cuatro subunidades idénticas de 60 KDacontiene cuatro grupos de ferroprotopporfirina por molécula no puede sersaturada por H2O2 a ninguna concentración, catalizando su conversión enagua y oxigeno, para proteger a la célula dde agua oxigenada. Con dadores de H (metanol, etanol, acido fórmico, fenoles…) presenta actividad peroxidasa.

    El H2O2 es catalizado enzimáticamente en organismos anaerobios por lacatalasa y otras peroxidasas. En animales, el peróxido de hidrogeno sedestoxifica mediante las actividades de la catalasa y la glutatión peroxidasa. La catalasa no es esencial para algunos tipos de células en condiciones normales,tiene un importante papelen la adquisición de tolerancia al estrés oxidativa en la respuesta adaptativa de las células.La catalasa captura el agua oxigenadade que pueda escapar de la célula y lo convierte en oxigeno molecular.


    CONSIDERACIONES TEÓRICAS

    CATALASA

     


    La catalasa es una enzima que se encuentra en organismos vivos y cataliza la
    descomposición del peróxido de hidrógeno (H202) en oxígeno y agua.

    El peróxido de hidrógeno es un residuo del metabolismo celular de muchosorganismos vivos, pero dada su toxicidad debe transformarse rápidamente en compuestos menos peligrosos. Para ello se usa con frecuencia esta enzima que cataliza su descomposición en agua y oxígeno. Además la catalasa se usa en la industria textil para la eliminación del peróxido de hidrógeno, así como enmenor medida se emplea en la limpieza de lentes de contacto que se han esterilizado en una solución de peróxido de hidrógeno.

    El mecanismo completo de la catalasa no se conoce, aun así la reacción
    química se produce en dos etapas:

    H2O2 + Fe(III)-E → H2O + O=Fe(IV)-E
    H2O2 + O=Fe(IV)-E → H2O + Fe(III)-E + O2

    Donde Fe-E representa el núcleo de hierro del grupo hemo unido a la enzima
    que actúan como cofactores.

    La enzima se presenta en forma de homotetrámero y se localiza en los
    peroxisomas.

    Esta enzima puede actuar como una peroxidasa para muchas sustanciasorgánicas, especialmente para el etanol que actúa como donante de hidrógeno.Las enzimas de muchos microorganismos, como el Penicillium simplicissimum,que exhiben actividad de catalasa y peroxidasa, son frecuentemente llamadascatalasas-peroxidasas

    La deficiencia en catalasa produce acatalasia. Esta enfermedad estácaracterizada por la ausencia de actividad de la catalasa en los glóbulos rojos yse asocia con las lesiones orales ulcerantes.

    La catalasa es una enzima que se encuentra en las células de los tejidos
    animales y vegetales.
    La función de esta enzima en los tejidos es necesaria porque durante elmetabolismo celular, se forma una molécula tóxica que es el peróxido dehidrógeno, H2O2 (agua oxigenada).

    Esta enzima, la catalasa, lo descompone en agua y oxígeno, por lo que se
    soluciona el problema.

    La reacción de la catalasa sobre el H2O2, es la siguiente:

    Reacción 
    La existencia de catalasa en los tejidos animales, se aprovecha para utilizar elagua oxigenada como desinfectante cuando se echa sobre una herida. Comomuchas de las bacterias patógenas son anaerobias (no pueden vivir conoxígeno), mueren con el desprendimiento de oxígeno que se produce cuandola catalasa de los tejidos actúa sobre el agua oxigenada.


    EFECTO DEL pH SOBRE LA ACTIVIDAD ENZIMÁTICA


    Sabiendo que las enzimas son proteínas, cualquier cambio brusco de pHpuede alterar el carácter iónico de los grupos amino y carboxilo en la superficieproteica, afectando así las propiedades catalíticas de una enzima. A pH alto obajo se puede producir la desnaturalización de la enzima y en consecuencia suinactivación. La fosfatasa ácida es más activa a pH 5,0, mientras que lafosfatasa alcalina lo es a pH 9,0. Muchas enzimas tienen máxima actividadcerca de la neutralidad en un rango de pH de 6 a 8.

    El pH per se no afecta la actividad enzimática, sino la concentración deprotones. Los protones además de alterar la estructura de la enzima y elsubstrato, pueden participar también en la reacción como substrato o producto.En esos casos, la concentración de protones afecta directamente la velocidadde la reacción.
    pH ÓPTIMO: Catalasa 7,6


    EFECTO DE LA TEMPERATURA:
    Un aumento en la temperatura provoca un aumento de la velocidad de reacciónhasta cierta temperatura óptima, ya que después de aproximadamente 450 Cse comienza a producir la desnaturalización térmica. Las enzimas de muchosmamíferos tienen una temperatura óptima de 370 C, por encima de esatemperatura comienzan a inactivarse y se destruyen Sin embargo existenespecies de bacterias y algas que habitan en fuentes de aguas termales y en elotro extremo ciertas bacterias árticas tienen temperaturas óptimas cercanas a 0ºC.
     


    PROCEDIMIENTO

    1.- organizar todos los tubos de ensaye con el material utilizado
    2.- medir el pH sin agregar el HCl y después de agregarlo con el papel pH
    3.- observar y anotar lo que ocurrió, antes de agregar el peróxido de hidrogeno
    marcar la reacción por observación.



    DISCUSIONES
    Con los resultados de la tabla y los experimentos realizados nos dimos cuenta

    que la presencia de la catalasa solo se presenta en los tejidos animales y
    vegetales ya que cuando se le agrega peróxido de hidrogeno a la sal y el
    azúcar, no reaccionaron ya que estas no son seres no vivos.

    El motivo de agregar HCl a las muestras fue con el objetivo de desnaturalizarlas,los resultados fueron positivos ya que al agregarles peróxido de hidrogeno no hubo efervescencia.
    En las  muestras cocidas notamos el efecto de la temperatura sobre la
    desnaturalización de la catalasa ya que al agregarle peróxido de hidrógeno
    tampoco hubo efervescencia.


    CONCLUSIONES

     El cambio de ph si afecta la actividad enzimática por que cuando se le agrego el hcl disminuyeron las reacciones conlas muestras, por lo consiguiente, con el peroxido de hidrogeno ya que el hcl desnaturalizo a la catalasa que esta es una proteína.
    también en el caso del azúcar y la sal no hubo reacción yaque estos son
    seres no vivos por lo tanto no tiene enzimas.

    Una reacción para ver la presencia de catalasa en nuestro organismo es
    Cuando sufrimos una cortada y en ese momento le agregamos agua oxigenada
    muchas personas solo saben que es para matar a las bacterias, pero no por
    que hay efervescencia y el motivo es por la presencia de catalasa en nuestros
    tejidos.



    CUESTIONES TEÓRICAS:


    1. 2 H2O2 (l) ----> 2 H2(l) + O2 (g)      ΔHº = −196,0 kJ
    2. Como hemos dicho anteriormente la catalasa es una enzima que se encuentra en diferentes células,entre ellas las vegetales como orgánulos de reserva.Al añadir agua oxigenada veremos una reacción en la que se libera oxígeno a consecuencia de la reaccion producida por la enzima.
    4. El calor es un agente desnaturalizante,que lo que hace es inactivar la enzima,por lo tanto no se lleva a cabo la reacción y no se produce oxígeno.
    5. El pH es otro agente desnaturalizante,y lo que hace es inactivar también la encima,haciendo que se desnaturalice y no se produzca reacción alguna.
    6. La catasa trabaja a un pH y a una temperatura determinada,pasados estos umbrales la encima va perdiendo su maxima actividad,incluso sobrepasados los umbrales,llega a desnaturalizarse.













    OBJETIVO: EXTRAER Y TERÑIR UNA MUESTRA DE ADN



    RESUMEN

    El proceso de extracción del ADN geonómico sigue ciertas pautas para su correcta purificación que son muy diferentes a los empleados en la purificación de proteínas, lo que refleja las diferencias básicas en la estructura de estos dos tipos de macromoléculas. El primer paso en la purificación del ADN por lo general consiste en homogeneizar las células y aísla los núcleos de los cuales se extrae el ADN. El medio de extracción ordinario contiene un detergente (SDS); a continuaciones le agrega solución de te para resuspender el ADN, luego los ácidos nucleicos se precipitan añadiendo etanol .Para concluir el análisis de la extracción del ADN hay que resaltar que e n este proceso ocurre una lisis celular lo cual significa que el ADN queda libre por consiguiente hay que protegerlo de las enzimas porque estas podrían degradarlo .



    INTRODUCCION

    El ácido desoxiribonucleico o ADN (DNA) es la molécula que guarda el código genético de todas las células. Sin importar que el organismo sea multicelular o unicelular, eucariota o procariota, todos tienen el DNA como vehículo de su código genético.
    Durante el laboratorio de hoy estaremos utilizando un método rápido para aislar DNA a partir de tejidos animales. Este se llama "DNeasy Tissue Kit" y es producido por QIAGEN. Este usa tecnología avanzada de membranas de silicato para purificar rápidamente DNA celular total sin usar extracciones orgánicas ni precipitación con etanol.
    El primer paso en la purificación del DNA consiste en homogeneizar las células y distar los núcleos de los cuales se extrae el DNA. El medio de extracción de ordinario contiene un detergente, como el SDS, que sirve para lisar los núcleos y liberar el DNA, hecho que aumenta notablemente la viscosidad de la solución. El detergente inhibe también cualquier actividad nucleasa en la preparación.
    El objetivo de los pasos de purificación es separar el DNA de materiales contaminantes, como RNA y proteínas.
    La desproteinización se logra en general agitando la mezcla con un volumen de fenol. El fenol (o alternativamente cloroformo) es un desnaturalizador activo de proteínas que suprime la solubilidad de las proteínas en la preparación y las precipita. Puesto que el fenol y la solución salina amortiguadora no se mezclan, solo se requiere centrifugar la suspensión para separar las bases, permaneciendo el DNA (y el RNA) en la solución dentro de la fase acuosa de arriba y la proteína presente como un precipitado concentrado en la interfase. La fase acuosa se retira del tubo y se somete a ciclos repetidos de agitación con fenol y centrifugación hasta agotar toda la proteína de la solución. Añadiendo etanol frío. El etanol frío forma una capa arriba de la solución acuosa del DNA, el cual, se enrolla sobre una varilla de vidrio conforme sale de la solución. En la interfase el RNA sale de la solución salina.
    En contraste, el RNA sale de la solución como precipitados que se asienta en el fondo del vaso. Luego de este primer paso de purificación, se disuelve el DNA y se trata con ribonucleasa mediante tratamiento con una proteasa. Enseguida se quita la proteasa por desproteinización con fenol y se vuelve a precipitar el DNA.





    Posteriormente las fases a seguir:


    1) triturar el higado 
    2)filtrar
    3)echar detergente y zumo de piña
    4)verter alcohol
    5)extraer ADN
    6)teñir una muestra de azul de metileno y observarla en el microscopio.

    'Extración del {ADN} genómico y electroferesis en gel'

    'Extración del {ADN} genómico y electroferesis en gel'
    'Extración del {ADN} genómico y electroferesis en gel'


    'Extración del {ADN} genómico y electroferesis en gel'










    CUESTIONES:

    1-El detergente se encarga de romper la pared celular y la membrana celular para que el nucleo celular libere el ADN 
    2-La papaína es una enzima que hidroliza y descompone las enzimas del higado con el fin de homogeneizar la célula.
    3-Pues es un colorante o un pigmento,al igual que podiamos haber usado anaranjado de anidrina que se fija en los enlaces nucleotídicos

    4- El ácido desoxirribonucleico, frecuentemente abreviado como ADN (y también DNA, del inglés deoxyribonucleic acid), es un tipo de ácido nucleico, una macromolécula que forma parte de todas las células. Contiene la información genética usada en el desarrollo y el funcionamiento de los organismos vivos conocidos y de algunos virus, y es responsable de su transmisión hereditaria.




    •     [ hay que realizarla ,en espera]





    • SEPARACIÓN DE PIGMENTOS VEGETALES MEDIANTE CROMATOGRAFIA  EN PAPEL:(pendiente)






    FUNDAMENTO TEÓRICO:
    Los cloroplastos deben  su  color  verde a  un pigmento denominado
    clorofila. Sin  embargo,  lo  que en realidad existe en los  cloroplastos es
    una mezcla de pigmentos representados principalmente por dos tipos de 
    clorofila (clorofila a y clorofila b), por β caroteno y por xantofila.
    Todas estas sustancias presentan un grado  diferente  de solubilidad, lo
    cual permite su separación cuando una solución de la misma asciende por 
    capilaridad por una tira de papel poroso (papel de filtro), ya que las más
    solubles se desplazarán a mayor velocidad, pues acompañarán fácilmente
    al disolvente a medida que éste  va ascendiendo. De esta forma, al cabo
    de cierto tiempo, a lo largo del papel de filtro se irán situando los distintos
    pigmentos en forma de bandas coloreadas, tanto más desplazadas cuanto
    más solubles sean los pigmentos  a  que pertenecen  y tanto más anchas
    cuanto mayor sea la abundancia de estos en la mezcla.
    1-












    2-porque es un disolvente orgánico, y hace soluble la sustancia que trata, de modo que asi podrá ascender por capilaridad.
    3-la clorofila a y la clorofila b





    La preparación presenta el aspecto de una dispersión de células por todo el campo  que abarca el microscopio.Se observarán células en diversas fases,o estados de división celular.Con esta técnica de tinción se ven los cromosomas impregnados por la orceína de color morado.El aspecto reticulado ,así como el mayor tamaño de algunos núcleos,corresponde a las células que se encontraban en los procesos iniciales de la división mitótica.






















    EN EL MICROSCOPIO: Se utilizarán primero los aumentos débiles con el fin de centrar la preparación y determinar la zona mejor para la visualización. Cambiar después a un aumento mayor.


    BIBLIOGRAFÍA:

    Aquí dejo una serie de fuentes de información que sirven como base para averiguar el fundamento de nuestros experimentos y hacer el cuaderno:
    -Enciclopedia de la ciencia. Ed.salvat
    -Biología 2º bachillerato ed.oxford
    -Fotocopias de clase
    -Anotaciones del profesor
    -Fuentes virtuales (Internet) [entre ellas]
    ·       Ciencia.net
    ·       Pagciencia.quimica.unlp
    ·       labbio.bligoo.com
    ·       Aula21.net
    ·       Wikipedia
    ·       JoseaCortés Microbiología












    TRABAJO DE LA SISTEMÁTICA DE UNA ESPECIE

    SISTEMÁTICA DE UNA ESPECIE:
    ENEBRO MARÍTIMO

                                                                                         Pablo Barragán Jiménez
                                                                                 2º-Bachillerato-A 
    JUNIPERUS MACROCARPA



     









    ÍNDICE

    ¨  UN POQUITO DE HISTORIA
    ¨  INTRODUCCIÓN
    ¨  CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA
    ¨  ¿DÓNDE SE ENCUENTRA?
    ¨  ¿CÓMO IDENTIFICARLO?
    ¨  CARACTERES SEXUALES-REPRODUCCIÓN
    ¨  ECOLOGÍA Y FUNCIÓN DE LA ESPECIE
    ¨  CRITERIO DE ELECCÍÓN



    UN POQUITO DE HISTORIA:

    En la Edad Media era común quemar incienso y enebro para ahuyentar a los "malos espíritus". Se usó en casos de pestes y para purificar el aire.
    El profeta Elías descansó bajo el enebro, por tal motivo fue considerado árbol sagrado. Se pensaba que tenía propiedades para alcanzar la paz interior.
    Por otra porte, el alcohol obtenido por fermentación con cereales como el maíz, centeno, etc. y destilado con gálbulos de enebro es la base de la fabricación de la ginebra.
    En Europa para condimentar coles fermentadas (chucrut), jamones, conservas de jabalí y cerdo se usan los gálbulos de esta planta.

    ESPECIE PROTEGIDA:

    En Peligro de Extinción según la ley 8/2003 de la Fauna y Flora Silvestres.
    ¡Existen muchas variedades dentro de su clasificación. Juniperus macrocarpa
    Arbusto singular de las costas andaluzas,dunas,arenales maritimos, aunque también en acantilados y roquedos.
    Generalmente mide 3m de altura.(hasta 5m)
    En la medicina popular se utilizan las bayas  como estimulante gástrico. De ahí viene el preparar vinos, licores y aguardientes con enebro: Gin, Ginebra, Steinhäger.





     EXPLICACIÓN DE LA DIVISIÓN:






    Pinophytas


    ¨  Comprende aproximadamente 64 géneros y 721 especies.
    ¨  Poseen como característica común la producción de semillas desnudas( no encerradas por macrosporófilos)
    ¨   La mayoría posee arquegonio; el lapso entre polinización y fertilización es muy largo ( de pocos a 15 meses). El tejido nutricio que acompaña al embrión es diploide.
    ¨   Principalmente son plantas arbóreas
    ¨  características xeromórficas, entre las que se distingue el tipo de hoja;  puede ser acicular y confinada en tallos cortos o grandes, pero en escaso número.

    ¨  2) Pinicae:
    ¨   Comprende las coníferas y el género Ginkgo.
    ¨  Viven predominantemente en las zonas templadas.
    ¨   En su mayoría son árboles grandes, muy ramificados.Las hojas son simples y muy pequeñas; de forma acicular escuamiformes.
    ¨   En sus tejidos abundan los conductos de resina.
    Incluye 50 géneros y 550 especies, aproximadamente.

    CARACTERÍSTICAS COMUNES A SU FAMILIA(cupresáceas)
    Características:
    ¨   Familia de 21 géneros y unas 130 especies distribuidas por todo el mundo, tanto en zonas costeras como montañosas.
    ¨  Árboles, arbustos, perennes, resinosos, con hojas pequeñas, escamosas o más aciculares, opuestas o en verticilos de tres. 
    ¨  Dioica o monoica, con flores masculinas y femeninas formando pequeños conos.
    ¨  Las masculinas formadas por unos pocos estambres escamosos. Las femeninas con pocas brácteas opuestas o verticiladas.
    ¨  Después de la fecundación forman estróbilos(conos) leñosos o arcéstidas carnosas. Las semillas sin alas.
    SINONIMIA:
    ¨  Juniperus oxycedrus a. lobelii
    ¨  Juniperus Juniperius subsp. macrocarpa 
    ¨  Juniperus umbilicata
    ¨  Juniperus willkommii
    unas 60 especies con más de 100 variedades y cultivares.
    *DIFERENCIAS ESPECIES: EN EL TIPO DE HOJA Y EL TIPO DE GALBULAS/BAYAS. 


    CARACTERÍSTICAS COPA Y TRONCO
    ¨  Copa: Cónica o aovada acabando en forma puntiaguda,irregular  y de tonalidades blanquecinas por sus hojas
    ¨  Tronco: corteza fibrosa,pardo grisácea











    CARACTERES SEXUALES-REPRODUCCIÓN
    ¨  ESPECIE UNISEXUAL DIOICA:
    Género se distingue porque los ejemplares femeninos tienen fruto.
    La mayor parte del ciclo lo constituye el esporofito
    Flores unisexuales:
    Flores Masculinas:
    constituidas por un tipo de anteridio denominado androceo, constituido por estambres o microsporófilos, y se agrupan en conos.
    En cada estambre se encuentran los granos de polen
    Flores femeninas:
    ¨  Constituidas por un tipo de arquegonio conocido como gineceo formando conos o piñas.
    ¨  Cada piña se dispone en brácteas, en estas estructuras se encuentran los ovulos quedando al descubierto,no encerrados en el carpelo.







    ECOLOGÍA Y FUNCIÓN DE LA ESPECIE
    ¨  Relleno bosques pobres por su adaptación, es el caso de las dunas.
    ¨  Protegen zonas interiores de temporales, convive con especies como la sabina negral y el pino piñonero
    ¨  No repoblación por su lentitud
    ¨  Se asientan en habitats donde existen variedades de especies como el camaleón.
    ¨  Funciones ecológicas en la cadena alimentaria costera, semillas,alimento para aves y mamíferos.



    CRITERIO DE ELECCIÓN



    ¨Por ser un endemismo
    ¨Porque es una especie protegida importante en España, y en especial en Andalucía, ya que se encuentra en muchos parques naturales
    ¨Porque es representativo de paisajes y zonas costeras
    ¨Porque es una especie que se adapta en lugares inestables como las dunas, lo cual su acción es insustituible






    INFORMACIÓN MÁS TÉCNICA DE LA ESPECIE(más profundidad)




    Juniperus macrocarpa
    Juniperus oxycedrus macrocarpa.JPG
    Juniperus macrocarpa en Cádiz, España
    En peligro (EN)
    J. macrocarpa
    Juniperus macrocarpa

    El enebro marítimo (Juniperus macrocarpa) es un arbusto de la familia de las cupresáceas.
    DESCRIPCIÓN
    El Enebro marítimo (Juniperus oxycedrus subsp. macrocarpa), es una planta que puede alcanzar los 5 m de altura, aunque generalmente presenta un porte arbustivo de unos 3 m de altura. Posee una copa muy tupida de forma cónica o aovada, acabando frecuentemente en forma puntiaguda. Tronco de corteza fibrosa, pardo grisácea, con hojas verticiladas por tres, aciculares, rígidas,punzantes, con dos franjas blancas por el haz, separadas por una nervio verde más estrecho. Esta característica lo diferencia del Enebro común (Juniperus communis) el cual sólo tiene una única franja blanca. Es una especie unisexual dioica, produce pies masculinos y femeninos.
    En Punta Umbría podemos observar la subespecie macrocarpa, es decir, grandes frutos o gálbulas. A diferencia de otros oxycedrus, las gálbulas del Enebro marítimo miden de 12-15 (25) mm, son globosas, verdes de joven y al madurar pardo-rojizas. Fructificando de Marzo a Mayo. Madurando sus gálbulas al segundo año.
    Este taxón se presenta en zonas costeras, sometidas a la brisa marina y formando parte en su etapa madura, de un enebral con sabinas. En Andalucía sólo está presente en la costa de Huelva, Cádiz y Almería. En Punta Umbría, concretamente en el Paraje Natural Enebrales de Punta Umbría y en la Reserva Natural Laguna de El Portil , se puede observar un ejemplo vivo y presente de un enebral maduro perteneciente a la geoserie Rhamno-Junipereto macrocarpae. Esta especie cuyas raíces están bien adaptadas a suelos inestables, contribuyen a la fijación de dunas costeras.
    Riesgos y agentes de perturbación
    Los principales problemas con los que se ha encontrado esta especie son: Talas indiscriminadas y los efectos de repoblación con pinares rompiendo el equilibrio de sus ecosistemas. Los incendios. La predación de plantas jóvenes. Por su distribución natural a lo largo del litoral, se ve afectado por una intensa y continua presión humana, sobre todo por la proliferación del núcleo urbano.
    Observaciones
    Posee una madera aromática de color rojizo y prácticamente incorruptible. Por su naturaleza ha sido utilizada: como vigas de techos, postes y pilares, dinteles de puertas y ventanas, etc.
    o destilación seca de su madera, raíces y cepa, se obtiene una especie de brea o pez, la “miera de enebro” o “aceite de cada” Presenta gran cantidad de resina con hidrocarburos y fenoles, se ha utilizado como insecticida y para dolencias cutáneas contra la roña del ganado.
    “Su papel natural es de relleno en bosques pobres. No es propio para repoblar por su lentitud de crecimiento, pero debe conservarse donde subsiste, especialmente en dunas, donde su acción protectora es insustituibles”.

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     El Enebro marítimo en Andalucía
    El enebro marítimo (Juniperus oxycedrus subsp. macrocarpa) es uno de los árboles más singulares de las costas andaluzas. Sus ejemplares, aislados o agrupados enpequeños bosquetes, pueden alcanzar los quince metros de altura; existe enebros machos y hembras, que florecen de diciembre a febrero.
    La distribución geográfica del enebro marítimo. Es una especie de distribución mediterránea, habitando tanto en el continente europeo como en el Norte de África. En la Península Ibérica, vive en las provincias de Huelva y Cádiz en Andalucía y el levante peninsular, en concreto en las provincias de Castellón, Valencia, Gerona y Mallorca. En Andalucía se han contabilizado unos 9.000individuos.
    ¿Cuál es su hábitat y por qué conservarlo?
    El hábitat característico del enebro marítimo es la zona cercana al mar,normalmente sobre sustrato arenoso, aunque también puede vivir en roquedos y acantilados como en el Parque Natural de La Breña y Marismas de Barbate. Pero exceptuando este último caso, los bosquetes de enebros marítimos suelen aparecer en zonas arenosas cercanas a la playa (sistemas de dunas).
    Estos ecosistemas costeros boscosos cumplen funciones socio-económicas y ecológicas muy importantes: protegen las zonas interiores de los temporales, son hábitats de especies vegetales y animales muy singulares como el camaleón común, son utilizados como zonas de turismo y recreo, y son zonas de un interesante uso bajo la perspectiva de la enseñanza medioambiental y ecológica. La conservación de este tipo de hábitats es fundamental para la permanencia de sus especies integrantes: hay muchas especies que dependen para su conservación del bosque dunar de enebros ysabinas. 
    La nueva visión de la conservación propugna la protección de hábitats potenciales para las especies, especialmente las más vulnerables. En estos hábitats costeros, el enebro marítimo aparece desde las zonas más cercanas a la playa, hacia las zonas interiores, conviviendo con otras dos especies arbóreas, la sabina negral (Juniperus98 Diversidad y Riqueza phoenicea subsp.  turbinata) y el pino piñonero (Pinus pinea), disminuyendo su abundancia hasta desaparecer a unos dos kilómetros hacia el interior. El enebro marítimo ha sido un árbol muy utilizado debido a la excelente calidad de su madera,por los pueblos de vocación marinera de la costa de Huelva y Cádiz, y a los productos que de ella se derivan. Así, por medio de la destilación seca de su leño y ramaje se obtiene aceite de miera o de cada. Este producto es resinoso y posee propiedades antisépticas y antiparasitarias, por lo que era muy utilizado en veterinaria para el ganado. Por otro lado, el enebro marítimo cumple funciones ecológicas muy importantes en la cadena alimentaria costera, produciendo semillas que sirven de alimento para aves y mamíferos. Además, el enebro marítimo aporta singularidad paisajística a los ecosistemas costeros. Su copa irregular y de tonalidades blanquecinas produce un fuerte contraste con las otras especies arbóreas que la rodean, el pino piñonero y la sabina, con copas regulares de formas aparasoladas y cónicas,respectivamente. Estas tres especies juntas forman bosques costeros de gran belleza paisajística, posiblemente, el más singular se encuentra en el Paraje Natural de Enebrales de Punta Umbría", en Huelva. 
    Estado de conservación y causas de regresión .El enebro marítimo es una especie protegida, catalogada "En Peligro de Extinción"en la ley 8/2003 de la Flora y la Fauna Silvestres. Se trata del árbol de zonas costeras con estado de conservación más deficiente en nuestra comunidad y con peor futuro no se toman medidas urgentes para regenerar sus poblaciones y ampliar su distribución evitando, en lo posible, su alto nivel de fragmentación. Para ello es necesario proteger además sus hábitats potenciales. En el momento actual,actividades como el desarrollo urbanístico y turístico en zonas costeras de una manera no sostenible con la conservación de la Naturaleza, han provocado y siguen provocando la desaparición y degradación del hábitat del enebro marítimo; así nos encontramos con actuaciones, algunas necesarias, como vías públicas o urbanizaciones que han acabado, por descuido, con ejemplares adultos o han esquilmado parte de su hábitat natural de expansión, condenando a las poblaciones de la especie a un nivel dramático de fragmentación. Pero la conservación del enebro marítimo no sólo se ve afectada negativamente por nuestro desarrollo social y económico: muchas de sus semillas no son viables, germinan muy poco y son destruidas por animales como el conejo. Esta problemática reproductiva provoca que sus poblaciones naturales muestren un proceso de envejecimiento, siendo los enebros jóvenes muy escasos, por lo que se cuestiona de forma evidente la persistencia de la especie.

    Diversidad y Riqueza
    Los científicos siguen investigando sobre esta especie “en peligro” para contribuir al desarrollo de estrategias a favor de su persistencia o políticas de repoblación en ecosistemas dunares.





    LA PESCA, PISCIFACTORIAS Y LA ACUICULTURA:



     + Proyectos en general:


    El siguiente trabajo consta de 3 Bloques diferentes:

    PESCA
    PISCIFACTORIAS
    ACUICULTURA
    CULTIVO ACUÍCOLA DE UN BIVALVO


    Cada bloque se encuentra en el blog de cada alumno:




    ÍNDICE DE LA EXPOSICIÓN:

    PARTE 1
    Importancia de la pesca
    Introducción histórica (breve)
    Evolución
    Problemasà a nivel mundial
    Pesca como recurso, punto de vista económico
    Recorrido a nivel mundial, España,andalucia,Cádiz
    Algunos organismos centros interesantes pesqueros
    Contar brevemente algunas formas de pesca y en qué especies(2/3 ejemplos)[arrastre,palangre,almadraba,etc]
    La sobrepesca,sobreexplotación pesquera= especies amenazadas,el atún.
    Gráficas.

    PARTE 2
    Importancia de las piscifactorías
    Objetivo frente al problema de la pesca
    Función a nivel industrial
    Plano de una piscifactoría
    Distribución en España,andalucia,cadiz
    ¿Qué especies se cultivan y porqué dependiendo del lugar? Relacionar con la provincia de Cádiz
    Esteros que se podrían cultivar y cuales son más económicamente rentables

    PARTE 3
    Otras formas de cultivar especies marinas,la acuicultura.
    Objetivo
    En qué consiste
    Riesgos
    Especies más cultivadas
    *Tipos:
    Hay unos cuantos, explicar.
    El trabajo se centra en el cultivo de un bivalvo,que es un tipo.
    Curiosidades

    PARTE4: CULTIVO ACUÍCOLA DE UN BIVALVO.
    introducción, bivalvos desde el punto de vista pesquero, análisis condiciones de un criadero:

    proyecto ifapa,qué hace ifapa,dónde se encuentra ,visita,
    ¿por qué cultivar bivalvos marinos? ¿qué son?
    ciclo de vida de un bivalvodiseño y estructura de los criaderos
    instalaciones de cultivos de algas
    productores y desove de productores
    zona de cultivo de larvas
    zona de cultivo de semillas
    otros requisitos de espacio
    nutrición y alimentación de moluscos bivalbos:
    -3 formas de cultivo en relación a la forma de producción.
    -mayores problemáticas del enfoque nutricional y desafíos a futuro
    conclusiones del trabajo
    aspectos a considerar para el establecimiento de un cultivo acuícola de moluscos bivalvos
    mecanismo de cultivo etapas

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    PARTE 4º:CULTIVO ACUÍCOLA DE UN BIVALVO


    PISCIFACTORIAS Y ACUICULTURA:


    ¿Qué es el IFAPA?
    El Instituto Andaluz de Investigación y Formación Agraria, Pesquera, Alimentaria y de la Producción Ecológica (IFAPA) fundamenta su creación en la voluntad de dar respuesta a las demandas de los sectores agrario, pesquero, acuícola y alimentario andaluz.El IFAPA pretende ser un instrumento ágil y eficaz en su funcionamiento, realista y pragmático en sus programas de actuación, y volcado en impulsar la investigación, la innovación tecnológica y la formación en el ámbito de la agrícola, pesquera y de las industrias alimentarias.
    ¿Qué hace el IFAPA?

    El IFAPA podrá desarrollar cuantas funciones sean necesarias para el cumplimiento de los objetivos previstos en el apartado anterior, sin perjuicio de las competencias que puedan corresponder a otras Consejerías. Específicamente tendrá las siguientes funciones:

    ·      Apoyar el desarrollo de las políticas agrarias, pesqueras, alimentarias y de producción ecológica de la Administración de la Junta de Andalucía en los ámbitos científico y formativo.
    ·      Diseñar y realizar los planes de investigación sectorial, con participación de los agentes implicados, teniendo en cuenta los objetivos, programas e instrumentos de los Planes de Investigación y Desarrollo Tecnológico vigentes en cada momento en Andalucía.
    ·      Planificar y llevar a la práctica los programas de información y formación de agricultores, pescadores, trabajadores y técnicos a través de la transferencia de tecnología, basados en los resultados de la investigación propia o ajena o de otras fuentes de conocimiento, así como evaluar sus resultados en función del grado de adaptación de aquellas tecnologías. Todo ello con sujeción y de acuerdo con los términos contenidos en el Plan Andaluz de Formación Profesional.
    ·      Servir de instrumento de apoyo a los sectores agrario, pesquero y alimentario mediante la prestación de servicios, la realización de estudios y asesoramiento y de las actuaciones complementarias que redunden en la mejora de los sistemas productivos.







             PRINCIPALES ESTEROS QUE SE CULTIVAN EN IFAPA:








    EN QUÉ CONSISTIÓ LA VISITA AL CENTRO EL TORUÑO?

    1) Presentación del centro IFAPA mostrando las principales líneas de investigación, formación y transferencia desarrolladas en el centro el Toruño.
    2) Exposición de carácter divulgativo de las diferentes fases de cultivo que actualmente se desarrollan en condiciones de cautividad en sus instalaciones.
    3) Visita guiada a los diferentes laboratorios(Histología, química, etc) con una demostración aplicada en diferentes fases de análisis y control de parámetros a tener en cuenta en el desarrollo de cultivos acuícolas.
    4) Recorrido por IMAGYMAR donde de forma gráfica se enseñó la producción en condiciones de cautividad de las principales especies acuícolas del Centro.
    5) Visita por las instalaciones del Centro El Toruño.
    ¿Qué nos pareció más interesante?
    ·         La cantidad de ejemplares y esteros que poseían en las piscinas y la gran talla de los lenguados y otras 

    especies como la corvina y la dorada.





    1)   INTRODUCCIÓN , BIVALVOS DESDE EL PUNTO DE VISTA PESQUERO, ANÁLISIS CONDICIONES DE UN CRIADERO:
    Los moluscos bivalvos (ostras, mejillones, almejas y vieiras) constituyen una parte importante de la producción pesquera mundial. De 1991 al año 2000, se observó un aumento constante de la producción de bivalvos, pasando de 6,3 millones de toneladas desembarcadas en 1991 a más del doble en 2000, con 14 204 152 toneladas métricas (t) de bivalvos procedentes de la pesca y de la acuicultura.


    Sin lugar a dudas, esta creciente tendencia global en el consumo de productos de mar va a continuar en el futuro, ya que los  productos de la pesca forman parte importante y esencial de la dieta en muchos países del mundo donde la necesidad de mayores producciones va a aumentar con el crecimiento demográfico mundial. La demanda de productos de la pesca también va a aumentar en aquellos países donde los productos del mar se consideran una parte importante y saludable de la dieta.
     La mayor parte de la demanda de productos del mar se refiere al pescado, sin embargo la producción y cosecha de moluscos, especialmente de bivalvos, también va a tener un papel esencial a la hora de satisfacer esta creciente demanda. La captación de bancos naturales de bivalvos va a seguir teniendo importancia, pero muchas de estas poblaciones naturales ya se encuentran cerca de los límites máximos sostenibles y en algunos lugares ya los han sobrepasado, situación que puede paliarse a través de la acuicultura, que ofrece una alternativa a la explotación de las poblaciones naturales. Durante el período 1991-2000, los desembarques procedentes de la pesca apenas aumentaron en 2,5-3,5 millones de toneladas, mientras que los desembarques procedentes del cultivo se duplicaron.
    durante el mismo período, aumentando de 6,3 a 14 millones de toneladas (Ilustración 2).En 2000 alrededor del 75% de la producción mundial de bivalvos procedía ya de alguna forma de cultivo .
    Los bivalvos son animales ideales para la acuicultura, ya que son herbívoros que requieren un manejo mínimo y que no necesitan más alimento que las algas que se encuentran de forma natural en el agua de mar. Aunque se hayan cultivado durante siglos, los recientes avances tecnológicos en el campo del cultivo de moluscos han permitido incrementar la producción de forma significativa. En la actualidad los métodos y tecnologías de cultivo requieren constantes mejoras, así como su perfeccionamiento para convertir el cultivo de bivalvos en una actividad económicamente rentable.
    Las zonas donde se puede practicar el cultivo de moluscos en el mundo son limitadas y será cada vez más difícil encontrar nuevos emplazamientos para esta actividad debido al incremento de la presión demográfica y el desarrollo urbanístico de las costas.
    Un requisito esencial para cualquier actividad de cultivo o de explotación es contar con semilla abundante, fiable y barata. Actualmente, en la mayoría de las explotaciones de bivalvos del mundo se recolecta la semilla en bancos naturales y se coloca el sustrato (material de fijación) en las zonas de reproducción; luego se recogen las larvas en metamorfosis, para luego transferir la semilla recolectada a las zonas de engorde hasta que ésta alcance la talla comercial.
     En otros casos, se recolecta la semilla en zonas de abundancia natural y se transporta a zonas de engorde que pueden estar alejadas de la fuente de semilla (telecaptación). La recolección de semilla en zonas de reclutamiento natural seguirá siendo importante en las explotaciones de bivalvos de todo el mundo y sin lugar a dudas en algunas zonas esta práctica podrá intensificarse para satisfacer la mayor demanda de semilla de las explotaciones. Es por tanto necesario reconocer la importancia que tienen estas zonas de reproducción y hacer un gran esfuerzo para conservarlas.
    Comparación de la producción procedente de la pesca y de la acuicultura con la contribución relativa de los principales grupos de bivalvos en 1991 y 2000.
    Vieiras 10,0%
    Almejas 20,4%
    Misc. 7,1%
    Ostras 8,4%
    Mejillones 6,8%
    Vieiras 18,8%
    Almejas 22,9%
    Misc. 43,0%
    Ostras 37,4%
    Mejillones 12,3%
    Vieiras 10,8%
    Almejas 24,7%
    Misc. 14,8%

    CAPTURA 1991

    (2,49 millones de t)
    CULTIVO 1991
    (3,78 millones de t)

    CAPTURA 2000
    (3,48 millones de t)
    CULTIVO 2000
    (10,72 millones de t)
    Ostras 5,8%
    Mejillones 10,2%
    Vieiras 19,5%
    Almejas 39,2%
    Misc. 25,3%
    Ostras 34,1%
    Mejillones 28,4%
    En muchos otros lugares de cultivo, no existen zonas de reproducción natural que suministren semillas y, si existen, no pueden producir suficiente semilla para satisfacer los requisitos de la fase de engorde.
    Se dan además otros inconvenientes que  condicionan la recolección de semilla natural para su uso en las actividades acuícolas, ya que, a veces, los engordadores de algunas zonas desarrollan y cultivan razas o variedades de bivalvos que se ajustan a sus necesidades particulares, pero puede que ese tipo de semilla no se encuentre disponible localmente.
    Otro caso es el de aquellos productores que deseen introducir una especie no alóctona (exótica) y no dispongan de una fuente de semilla, para los que la alternativa consiste en la recolección en bancos naturales de bivalvos para producir luego la semilla en el criadero.
    Los criaderos de bivalvos llevan funcionando más de cincuenta años y hoy en día están bien implantados en muchos países, formando parte integral de muchas explotaciones y constituyendo la mayor o única fuente de semilla.
     Indudablemente en el futuro los criaderos de bivalvos desempeñarán un papel muy importante dentro del conjunto de actividades acuícolas, conforme la explotación de moluscos se especialice y aumente la demanda de semilla. Los criaderos ofrecen varias ventajas con respecto a la recolección en bancos naturales ya que son fiables y pueden suministrar semilla a los engordadores según sus requisitos y cuando les sea conveniente –a menudo mucho antes en la época de crecimiento que con los bancos naturales. Pueden proporcionar semilla que no está disponible en los bancos naturales, como es el caso de las variedades genéticas con características biológicas mejoradas para su explotación en zonas locales o semilla de bivalvos exóticos. El coste supone la mayor desventaja de la producción de semilla en criadero ya que es más caro criar la semilla en unas instalaciones que recolectarla de un banco natural. Aunque en el pasado los factores económicos probablemente hayan sido la causa del fracaso de algunos criaderos de bivalvos, las recientes mejoras tecnológicas han potenciado enormemente su fiabilidad y su viabilidad económica, puesto que es posible producir semilla a precios competitivos y, de hecho, en algunas partes del mundo, los criaderos constituyen la única fuente de semilla para la industria acuícola comercial. No obstante, aún queda margen para acrecentar la eficacia de los criaderos y aumentar su aceptación como mejor fuente de semilla.
    La construcción y el funcionamiento de un criadero de bivalvos es una empresa importante y costosa, por lo tanto la fase de desarrollo tiene que estudiarse concienzudamente, de lo contrario irá al fracaso.

    2)   DISEÑO Y ESTRUCTURA DE LOS CRIADEROS:
     Los criaderos varían enormemente en cuanto a su diseño, configuración y construcción, en función de las especies cultivadas, objetivos de producción, y, sobre todo de las condiciones locales y las preferencias personales de sus propietarios o de la empresa.
    En cambio, los elementos básicos son los mismos para cualquier criadero de bivalvos e incluyen un método para acondicionar a los reproductores e inducir la puesta, criar y fijar las larvas, engordar la semilla hasta una talla aceptable, y unas instalaciones para la producción de grandes cantidades de algas para la alimentación en todas las fases del ciclo productivo. Si bien los elementos esenciales son comunes a todos los criaderos, también es cierto que existen variaciones en cuanto a tecnologías y a la eficacia en cada fase productiva, que deben ser mejoradas de forma constante para conseguir que los criaderos sean cada vez más rentables.
    ·       Instalaciones para el cultivo de algas
    El éxito de un criadero de bivalvos depende de la producción de algas. Es una parte muy importante de cualquier criadero y es imprescindible un buen diseño para proporcionar una zona de trabajo adecuada para este fin ya que se necesita contar con grandes cantidades de algas de alta calidad.
    El espacio necesario para el cultivo de algas dependerá en parte de los niveles de producción, los métodos de cultivo y si las algas se van a cultivar dentro del criadero con iluminación artificial, o si se van a criar en el exterior con luz natural, o una combinación de los dos métodos.
    Si se opta por usar la luz natural se necesitará un invernadero bien ventilado que tendrá que instalarse de forma tal que reciba la máxima cantidad de luz solar, aunque habrá que proteger a los cultivos más jóvenes o menos densos del sol directo.
    se cultivan en matraces de 4 l y botellones de 20 l delante de una batería de lámparas fluorescentes (LF). El espacio necesario dependerá del número de especies y la cantidad de algas que se produzcan. Requieren un aporte de aire y dióxido de carbono y debe mantenerse de 15 a 18 ºC.
    El tamaño de la zona principal de cultivo de algas dependerá del número de especies que se cultiven y de la cantidad de algas que se necesiten. Esta zona puede llegar a ocupar una parte sustancial del criadero.Si la mayoría de las algas se cultivan dentro del criadero utilizando el método de cultivo en tandas entonces tiene que haber suficiente espacio para una serie de tanques de 3-4 mde diámetro y 2 m de profundidad. Si se emplean los métodos de cultivo en saco o cilindro alto se puede reducir la superficie de suelo necesaria. Las reactancias para las lámparas fluorescentes empleadas para iluminar los cultivos tienen que ser del tipo «funcionamiento en frío» o estar aisladas en una zona independiente desde donde se pueda disipar el calor que generan. En condiciones ideales esta zona debería mantenerse de 15 a 20 ºC.En muchos criaderos, una parte importante de las algas, si no todas, se cultivan en invernaderos, que pueden ser estructuras independientes o anejas a un lateral del criadero –preferentemente el lado sur en el hemisferio norte y el lado norte en el hemisferio sur– para así obtener máxima luz solar. El tamaño de los invernaderos dependerá del método de cultivo y de las cantidades de algas que se vayan a producir.
    Debe haber suficiente energía eléctrica para la iluminación artificial cuando la natural es inadecuada. El aporte de aire y dióxido de carbono es esencial. También deberá haber una correcta ventilación o instalación de aire acondicionado para mantener la temperatura a o por debajo de 20 ºC aquellos días en los que la fuerte luz solar calienta las instalaciones.
    Zona de mantenimiento y desove de reproductores
    Se necesita contar con espacio para mantener y acondicionar a los reproductores .
    Esto dependerá en parte del número de especies que se mantienen y si el acondicionamiento o parte de éste se realiza en entorno abierto en lugar de en el criadero. Puede que sea preciso utilizar agua de mar calentada o refrigerada en esta parte del proceso en algunos períodos del año.
    También es deseable poder aislar los tanques para así ajustar el fotoperíodo ya que las fluctuaciones de luz y oscuridad pueden afectar a la maduración de las gónadas.
    Hay que contar con espacio para las bandejas de desove (bd), aunque éstas pueden formar parte de la zona de cultivo larvario ya que el espacio no se necesita de forma continua. Luego se pueden almacenar las bandejas o platos de desove cuando ya no se empleen. Existen una serie de métodos para el acondicionamiento de reproductores, desove y fecundación

    ·        Zona de cultivo de larvas
    Otra parte importante del criadero está ocupada por la instalación de cultivo larvario (CL). El espacio está ocupado por tanques, en un número que dependerá de los niveles de producción y las técnicas utilizadas para cultivar las larvas. En la costa pacífica de Norteamérica se cultivan larvas a densidades bajas de 2-3 por ml en grandes tanques que miden 3-4 m de diámetro, 4-5 m de altura, con capacidad para 40 000 a 50 000 l. En otros criaderos, las larvas se cultivan en tanques más pequeños de hasta 5 000 l de volumen a densidades larvarias mayores. Cuando se diseña esta parte del criadero, el gerente debe tomar decisiones sobre la producción deseada para satisfacer la demanda del mercado y la metodología que empleará para criar las larvas.
    Los tanques de cultivo larvario están normalmente realizados en fibra de vidrio o de un plástico adecuado y deben estar convenientemente lavados antes de su uso.
    Independientemente del tamaño del tanque, es preciso que haya grandes desagües por debajo del nivel del suelo capaces de soportar grandes volúmenes de agua cuando se vacíen los tanques. En la sala de cultivo larvario se necesita contar con una zona de preparación (P) para lavar, clasificar, contar y medir las larvas y para acomodar el equipo utilizado.
    Zona de cultivo de semilla
    Una vez que las larvas maduras se han fijado (se han asentado y han iniciado la metamorfosis) se trasladan a tanques en la sala de cultivo de juveniles (CJ) para su cultivo hasta que alcancen la talla suficiente para transferirse a los sistemas de semilleros, que pueden estar en el criadero o en otro sitio. Normalmente esto ocurre cuando los juveniles (semilla) sobrepasan los 2 mm de longitud de concha.
    El tamaño y tipo de tanques, en cuanto a volumen y superficie utilizada para este fin, varía de una especie a otra.
    Las larvas maduras se fijan en el criadero o en instalaciones externas (a veces a cierta distancia). Cuando este procedimiento se da dentro del criadero se suele hacer en la zona de cultivo larvario, y con frecuencia directamente en los tanques larvarios. Puede que sean necesarios tanques adicionales para estos propósitos específicos.
    La semilla (fase inicial de juveniles) se transfiere después a los sistemas de tanques en una zona independiente y específica para el cultivo de juveniles (JC). El tamaño y tipo de tanques, en cuanto a volumen y superficie utilizada para este fin, varía de una especie a otra. Los juveniles se crían en sistemas de circulación ascendente, descendiente o en bandejas con variada configuración hasta que sobrepasan los 2 mm de longitud de concha. No es muy rentable cultivar la semilla hasta una talla superior dentro del criadero basándose en alimento cultivado ya que las necesidades de alimento incrementan de manera exponencial con el tamaño. Si el sistema de semillero está ubicado fuera del criadero, se debe asignar suficiente espacio para esta actividad.
    Existen unos métodos de cultivo larvario.
    ·        Otros requisitos de espacio
    Como se ha comentado antes, los criaderos que trabajan con reproductores procedentes de lugares remotos o con especies exóticas a veces necesitan someterlos a cuarentena y cultivar las crías de forma separada.
    En el laboratorio seco se realizan las trasferencias de algas (si no hay otro espacio asignado para esta actividad), se pesan y mezclan las sustancias químicas, se guardan los microscopios para estudiar los cultivos, los registros y el equipo científico.
    La maquinaria estática, como las bombas principales, filtros y prefiltros de arena (para eliminar partículas de hasta 10 μm), el módulo de calentamiento o enfriamiento de agua de mar, las calderas, el sistema de ventilación, los compresores o calefactores de aire, un generador de reserva para suministrar energía en caso de emergencia.
     Se necesita aire comprimido en todas las fases del cultivo así como anhídrido carbónico para el cultivo de algas. En muchos criaderos las bombas de entrada de agua de mar y los filtros de arena están ubicados en una caseta de bombas cerca del punto de captación y la filtración final de agua de mar puede hacerse en el punto de uso en lugar de en el módulo central de filtración fina.
    Es preferible que las distintas partes del criadero se puedan aislar en caso de que haya un brote de alguna enfermedad.



    3)   ¿POR QUÉ CULTIVAR BIVALVOS MARINOS?
    Los moluscos bivalvos en general son organismos relativamente fáciles de cultivar porque son:
    •          Filtradores: se alimentan del material en suspensión que se encuentra en la columna del agua principalmente de microalgas (fitoplancton).
    •          “Sésiles”, que no se mueven grandes distancias.
    •          Fáciles de manipular.
    •          Resistentes fuera del agua.
    •          Altamente productivos




    ¿QUÉ ES UN BIVALVO?
    Bivalvia, bi = dos; valvia = valva o concha. Organismo con dos valvas ligadas
    * [Bivalvo molusco pelecípodo con concha de dos valvas unidas por un charnel]
    Los bivalvos son animales filtradores, es decir bombean hacia el interior agua cargada de alimento, que consiste en partículas muy pequeñas. Estas partículas invisibles al ojo humano, son principalmente plantas y se denominan fitoplancton. Los sexos de los bivalvos suelen estar separados (dioicos) o ser hermafroditas (monoicos). La gónada puede estar visible y ser un órgano bien definido, como en el caso de los pectínidos, u ocupar una porción importante de la masa visceral, como en el caso de las almejas. En las ostras, la gónada sólo es visible durante la estación reproductora cuando llega a ocupar hasta el 50 del volumen del cuerpo










    .
    CICLO DE VIDA DE UN BIVALVO:

    En la mayoría de las especies de bivalvos de interés comercial, los gametos (ovocitos y espermatozoides) son expulsados al agua, donde ocurre la fecundación externa. En un período de 24 horas, el huevo fecundado pasa por las fases multicelulares de blástula y gástrula y en las 12 horas siguientes se convierte en una larva trocófora con motilidad y posteriormente le sigue una larva en forma de “D”. La larva tiene dos valvas, un sistema digestivo completo y un velo. El velo es un órgano circular que sólo se encuentra en las larvas de los bivalvos y puede sobresalir de las valvas. Gracias a los cilios que se encuentran a lo largo del margen exterior, las larvas pueden nadar para mantenerse en la columna de agua. Cuando la larva nada, toma el alimento (fitoplancton) a través del velo para alimentarse. Posteriormente, la larva se fija a un sustrato para asentarse. La duración de la fase larvaria varía entre 18 y 30 días, dependiendo de la especie y o de determinados factores ambientales como la temperatura.









    4) NUTRICIÓN Y ALIMENTACIÓN DE MOLUSCOS BIVALBOS:

    INTRODUCCIÓN
    Los estudios nutricionales en moluscos bivalvos son escasos debido, principalmente, al carácter de cultivo extensivo que tiene la engorda de estos organismos. Sin embargo, existe una gran abundancia de estudios ecofisiológicos, enfocados en la alimentación y parámetros nutricionales, en poblaciones naturales y de cultivo de mitílidos, ostreidos, venéridos y pectínidos.
    Podemos agrupar  las 3 formas de cultivo en relación a tres grandes categorías de producción:
    a)    CULTIVO CONTROLADO:
      Este tipo de cultivo requiere de condiciones apropiadas de alimentación y nutrición que permitan la emisión de gametos abundantes y viables :






    por parte de los reproductores, la producción de una progenie larvaria de alta sobrevivencia con alta competencia en el proceso de metamorfosis, y la obtención final de juveniles con alta tasa de crecimiento y alta sobrevivencia .
    Todas estas fases se realizan bajo condiciones controladas de laboratorio y el alimento suele ser en base a una o mas especies de microalgas (Uriarte  et al., 2001).
    Existen en la actualidad centros experimentales e industriales que se dedican al cultivo controlado, suele denominárseles hatchery o centro semillero, ya que por lo general producen juveniles para dar inicio a las actividades de engorda, estos juveniles comercialmente se denominan «semillas» y suelen tener tallas entre 1 y 20 mm, dependiendo de la especie que se cultive y del tipo de cultivo de que se trate.

    Las etapas más consumidoras de alimento en el cultivo controlado son las de acondicionamiento reproductivo y de cultivo de juveniles.
     Las etapas que requieren mayor cuidado y presentan la mayor mortalidad son las de cultivo larvario y de fijación y metamorfosis.
     La etapa larvaria es altamente sensible a la contaminación bacteriana, por lo que el alimento microalgal debe estar bien controlado en este aspecto, y requiere de alta calidad en términos de contenido y calidad de proteinas, lípidos, y carbohidratos.

     Aunque durante la fase embrionaria y la fase larvaria los bivalvos pueden utilizar materia orgánica disuelta en el agua, tanto aminoácidos, como azúcares (Langdon, 1982; Manahan y Crisp, 1982; Farías  et al., 1998), son las microalgas la principal partícula utilizada en su alimentación, por lo que existen numerosos estudios acerca de la calidad de diferentes especies de microalgas (Chu y Webb, 1984; Brown, 1991; Brown y Miller, 1992; Brown y Farmer, 1994)
    .
    Ejemplos de microalgas, de diversos estudios actuales:
     También, se han estudiado posibles sustitutos de las microalgas con los objetivos de reducir costos de producción, disminuir la dificultad tecnológica y variabilidad nutricional del cultivo microalgal, e, incluso, mejorar la calidad nutricional de las microalgas vivas, entre estos sustitutos se encuentran las levaduras (Coutteau et al., 1994; Chien y Hsu, 2006), las microalgas secas (Doroudi et al., 2002; Espinosa y Allam, 2006), las pastas de microalgas ,etc

    CULTIVO DE ENGORDE:

    Este tipo de cultivo se puede iniciar a partir de semillas capturadas en colectores y provenientes de poblaciones naturales o, alternativamente, a partir de juveniles producidos bajo condiciones controladas de cultivo; en cualquiera de ambos casos el cultivo se prolonga en el mar hasta alcanzar el tamaño comercial (Figura 2).
     Este tipo de cultivo se realiza en sistemas extensivos por lo que los estudios nutricionales o de alimentación no son relevantes, y la capacidad de carga de los ecosistemas en que se realiza la engorda pasa a tener una alta relevancia ya que de ello depende la tasa de crecimiento, sobrevivencia, acumulación de reservas energéticas y composición bioquímica de los tejidos (Smaal  et al., 1997; Dame y Prins, 1997; Melià y Gatto, 2005). Esta capacidad de carga se define tanto en los términos de una disponibilidad de partículas alimenticias apropiada en el seston, como de variables físico-químicas que permitan cultivar la biomasa de juveniles y adultos que hagan sustentable el cultivo. Para este tipo de cultivo se han desarrollado modelos predictivos de crecimiento, que se basan principalmente en determinar características nutricionales simples del seston, como son el contenido orgánico, y el contenido de proteínas y/o de carbono de las partículas, y requieren conocer previamente, desde estudios empíricos, las relaciones matemáticas entre la calidad del alimento y la variables nutricionales como tasa de consumo, eficiencia de alimentación y eficiencia de absorción del bivalvo (Bayne, 2002; Suplicy, 2004).Poblaciones naturales sujetas a extracción. En el caso de las poblaciones naturales que están sujetas a pesquerías, en general los estudios de nutrición y alimentación no han sido relevantes, habiéndose hecho mayor énfasis en los estudios de acumulación
    y uso de las reservas energéticas de bivalvos en relación a ciclos reproductivos y de desove, principalmente para determinar periodos de cosecha o de veda de las especies (Figura 3). Para algunas poblaciones de mitílidos y ostreidos también, se han estudiado las relaciones entre ingestión-absorción del alimento y calidad-abundancia de las partículas orgánicas del seston, incluyendo estudios enzimáticos y de interacción con variables ambientales físicas, principalmente temperatura. Ello ha permitido desarrollar modelos predictivos de la abundancia y crecimiento de bivalvos.

    Las especies más estudiadas en cuanto a su alimentación y nutrición han sido los mitílidos, los pectínidos, los ostreidos y los venéridos(numerados en órden de preferencia del 1-4).


    MAYORES PROBLEMÁTICAS DEL ENFOQUE NUTRICIONAL Y DESAFÍOS A FUTURO
    1.      Requerimientos nutricionales en cultivos controlados
    2.      Búsqueda de sustitutos de microalgas en la alimentación en cultivos controlados
    3.      Contribución a la predicción del crecimiento y sobrevivencia en cultivos controlados
    4.      Contribución a la predicción del crecimiento y sobrevivencia en cultivos de engorda o en poblaciones naturales
    5.      Manejo de la calidad nutricional de los bivalvos como producto final





    CONCLUSIONES DEL PROYECTO:


    • ·         Los países que ya cuentan con desarrollo del cultivo controlado para especies exóticas y nativas, deben aumentar la eficiencia de las diferentes etapas de este tipo de cultivo. Dado que el costo de la alimentación puede ser de hasta 60 por ciento del costo de producción, este es uno de los aspectos que deben aumentar su eficiencia a través de tecnologías que permitan producir más y mejor alimento para bivalvos, buscando optima combinación de nutrientes energéticos y esenciales tanto en el alimento vivo como en el alimento inerte. Bajar los costos de alimentación supone mejorar la eficiencia de la producción controlada de semilla y para ello deben aumentar los estudios nutricionales en reproductores, larvas y postlarvas.



    • ·         En los cultivos de engorda y en las poblaciones sometidas a extracción se requiere de modelos que relacionen la oferta de alimento natural con la producción de gametos viables y el éxito del reclutamiento, para así disponer de una captación natural predecible. También se debe priorizar el desarrollo modelos predictivos del crecimiento y la sobrevivencia de moluscos bivalvos en cultivo y en poblaciones naturales que se basen en relaciones consistentes entre la calidad de la oferta del alimento natural y la fisiología nutricional de estos organismo.

    ESPECIES ACUÍCOLAS MÁS CONOCIDAS:

    Peces de agua dulce

    Anguila 

    Peces marinos

    Moluscos marinos



    Hay en la actualidad más de 100 especies que se pueden cultivar en el mar según la Comisión Europea de Pescas.
    A continuación nos centraremos en el cultivo de bivalvos, que puede ser cualquier tipo, tal como el mejillón.
    Dependiendo de la especie tendrán una forma de alimentación, época de cosecha máxima distinta, más particular de la especie.





















    -INVENTARIO DE LABORATORIO, MICROSCOPIOS:

    A CONTINUACIÓN HACEMOS UNA BREVE LISTA DE LA MARCA,LENTES Y ESTADO DE LOS DISTINTOS MICROSCOPIOS Y BINOCULARES DEL LABORATORIO DE BIOLOGÍA.

    rojo = mal estado

    -TODOS LOS MICROSCOPIOS SON DE LA MARCA: UKA TECHNIC
                                                                                   PROFESSIONAL MICROSCOPIO

    • Por mesa de trabajo:(LENTES)  xnº(número de aumento de la lente)
                                  (x) número de unidades 
    M1               x5(1)     x16(4)
    M2    x5(2)   x10(1)   x16(2)
    M                                                          M3            x20(2)    x10(2)


    M4         x5(2)  x16(2)  x10(2)


    • Aparte:

    M5 x10(4)
    M6 x20(2)
    M7 x10(2)
    M8 x10
    M9 No funciona,bombilla fundida x16(1) x10(2)
    M10 funciona pero lentes en mal estado x10(2)
    CAJA VACÍA,falta microscopio





    -LOS BINÓCULOS SON DE LA MARCA ENOSA CE.JA 1985 1.75x
    B1=B2=B3=B4=B5=B6=B7
    ESTADO:  BUENO
    OBJETIVOS COMUNES: 12.5X(2)·binóculo
    B8= no funciona el regulador.




    Foto de Microscopio ENOSA L90.1



    -INCUBADORAS 
    de PVC(2)
    de cristal(2)
    -ACUARIOS(2)




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